Эпизоотология экзамен общая часть


История развития эпизоотологии и её связь с другими науками. Задачи эпизоотологии
Философы Древней Греции и Древнего Рима (Демокрит, Фукидит, Вергилий) говорили, что причиной возникновения массового заболевания людей и животных служит какое-то заразное начало, передающееся от больного к здоровому, непосредственно или через предметы ухода. Они также замечали, что при многих инфекционных болезнях после выздоровления люди и животные становятся невосприимчивыми к повторному заражению.
Итальянский врач и астроном Фрокастро в своей книге «О контагии, о контагиозных болезнях и лечении»: зараза (контагий) – материальное начало. Он впервые использовал термин «инфекция». Заражение происходит тремя путями: через соприкосновение, через предметы и на расстоянии при участии мельчайших невидимых контагий. Параллельно с учение о контагиозных болезнях развивалась также теория о миазматических болезнях. Эта теория объясняла причину вспышек инфекционных болезней как воздействие на организм вредного воздуха (миазмы). Сторонником этой теории был Гиппократ. Миазмы – дурно пахнущие испарения, образующиеся при разложении трупов в почве, воде, воздухе. Исходя из этого, борьба с инфекционными болезнями сводилась лишь к устранению неприятных запахов путем проветривания, окуривания и т.д.
В период средневековья бытовая культура и гигиена оказались на более низком уровне по сравнению со временами античности. Поэтому инфекционные болезни получили панзоотическое распространение, а материалистические идеи греков и римлян были почти забыты. Довольно долго массовые болезни объясняли божьей карой и происками дьявола.
С появлением микроскопа (Левенгук) начался новый этап развития эпизоотологии. Левенгук рассматривал воду из водоемов, настои, кровь. Он обнаружил мельчайшие существа (анималькули) шаровидной, палочковидной и извитой формы. Это открытие побудило многих исследователей к изучению микроорганизмов, но на протяжении многих лет исследования сводились лишь к описанию различных форм микроорганизмов.
Бурное развитие микробиологии, эпидемиологии и эпизоотологии начинается со второй половины 19 века благодаря работам Луи Пастера. Он открыл сущность природы гниения и брожения: доказал, что причина брожения и гниения – микроорганизмы, вырабатывающие различные ферменты. Занимаясь изучением природы заразных болезней, Луи Пастер открыл возбудителя холеры кур (пастереллез), рожи свиней, сибирской язвы; стафилококков, стрептококков. Обнаружил важное свойство патогенных микроорганизмов – способность к ослаблению вирулентности. На этой основе им была разработана теория аттенуации – ослабления вирулентности микроорганизмов. Луи Пастер успешно использовал ослабленные культуры микроорганизмов для приготовления вакцин. Он предложил методы получения вакцин против холеры кур, сибирской язвы и бешенства.
Роберт Кох - методы микробиологических исследований: плотные питательные среды, методы окраски микроорганизмов анилиновыми красителями, применил для микроскопии иммерсионную систему, научно обосновал теорию дезинфекции, выделил и изучил возбудителей туберкулеза, холеры человека, ему принадлежит изобретение туберкулина для аллергической диагностики туберкулеза. Постулаты, предложенные Кохом в 1876 году: возбудитель находится в организме при заболевании; его можно выделить в чистом виде на питательных средах; при введении возбудителя здоровому животному происходит заболевание; болезнь можно воспроизвести, заражая выделенным возбудителем опытное животное.
В 1892 году Ивановский установил новый вид возбудителей, проходящих через бактериальные фильтры, невидимых в микроскоп и не растущих на питательных средах. Он открыл первый из вирусов – возбудителя табачной мозаики.
Мечников разработал фагоцитарную теорию иммунитета. Эрлих разработал гуморальную теорию иммунитета. За эти открытия им была присуждена нобелевская премия.
Автором первого Лечебника домашних животных был профессор московского университета Андриевский. С 1802 по 1806 гг. были открыты ветеринарные кафедры в различных вузах. Первый учебник по эпизоотологии под названием «Эпизоотологические болезни или скотские падежи» опубликовал в 1836 году профессор Лукин. В 1846 году профессор Всеволодов написал руководство по эпизоотологии: «опыт учения о повальных и заразительных болезнях животных». Затем появились руководства профессоров Равича и Раевского, в которых авторы попытались изложить основы эпизоотологии. В знаменитой книге венгерских ученых Букера и Марека «Частная патология и терапия домашних животных» в 1905 году было приведено подробное описание более 100 инфекционных болезней животных. Эта книга была издана в 3 томах, выдержала 11 изданий и не потеряла значения в настоящее время.
В 19 веке Цинковский приготовил вакцину против сибирской язвы. Кальнинг предложил маллеин для аллергической диагностики сапа. Коневым была получена вакцина против рожи свиней. Также русскими учеными был изготовлен ряд сывороток для лечения инфекционных болезней животных. Особый вклад внес академик Вышилевский. В 1923 году он в государственном институте экспериментальной ветеринарии (ГИЭВ) создал отдел по борьбе с сапом. Кроме изучения сапа, он занимался изучением возбудителя туберкулеза, бруцеллеза, сибирской язвы, ящура, инфекционного энцефаломиелита лошадей и др. В 1935 году Вышилевский совместно с Мазеем написал первый в стране учебник «Частная эпизоотология». Ганнушкин (ученик) в 1940 году издал учебное пособие «Общая эпизоотология».
Благодаря исследованиям по эпизоотологии такие заболевания, как чума, сап, эпизоотический лимфангит лошадей, инфекционная плевопневмония коз были ликвидированы в нашей стране. Однако многое в инфекционной патологии и эпизоотологии остается неясным и требует дальнейшего изучения.
Связь эпизоотологии с другими науками
С микробиологией, вирусологией и иммунологией (разрабатывают средства диагностики, специфической профилактики и лечения). С клинической диагностикой, патологической анатомией и физиологией, фармакологией, терапией и хирургией (в диагностике инфекционных болезней и при оказании помощи больным животным). С ветеринарной санитарией и зоогигиеной. Ветеринарная статистика, С географией, экономикой и организацией ветеринарного дела в стране. С зоологией и паразитологией. С эпидемиологией. Ученый Сталибрасс (1963): все науки несут помол на мельницу эпизоотологии.
Задачи эпизоотологии:
Изучение закономерностей эпизоотического процесса, т.е. причины возникновения, развития, распространения, угасания и исчезновения инфекционных болезней; влияние условий внешней среды на интенсивность этого процесса.
Разработка и совершенствование методов профилактики и ликвидации инфекционных болезней животных, при активном вмешательстве человека в объективные закономерности эпизоотического процесса.
Эпизоотический процесс и его особенности
Эпизоотический процесс
ЭП – взаимодействие источника возбудителя инфекции, механизма его передачи и восприимчивых животных, которое ведет к появлению, распространению и исчезновению среди животных явных и скрытых инфекций. Проявляется появлением и распространением инфекционной болезни в результате цепной передачи возбудителя от зараженных животных восприимчивым здоровым животным. Он свойственен всем инфекционным болезням и в своей основе направлен на сохранение в природе специфического возбудителя инфекции. Основные элементы эпизоотической цепи в конкретных условиях выступают в роли непосредственных (первичных) биологических движущих сил эпизоотического процесса.
Первичные (непосредственные) биологические движущие силы ЭП
Источник возбудителя инфекции
Зараженный организм животного, в котором патогенный микроорганизм сохраняется, размножается и выделяется во внешнюю среду. Степень опасности зараженного животного неодинакова в различные периоды болезни. В начале инкубационного периода выделение возбудителей зараженными животными при большинстве инфекционных болезней не наблюдается. При некоторых болезнях (бешенство, ящур, чума свиней) к концу инкубационного периода может происходить микробовыделение, и может происходить заражение здоровых животных.
Клинически больное животное, особенно при остром течении болезни. В это время возбудитель выделяется из организма зараженного животного всеми доступными его путями. Животные при скрытых инфекциях, при атипических, субклинических, латентных формах, при абортивном течении. Трудно выявить. Реконвалесценты и выздоравливающие животные после исчезновения клинических признаков животные некоторое время могут выделять возбудителя во внешнюю среду. Здоровые животные – микробоносители. Больные люди (например, туберкулезом, трихофитией, микроспорией). Дикие животные (ящур, бешенство, чума свиней, лептоспироз, листериоз, болезнь Ауески).
Совокупность животных определенных биологических видов, являющихся естественными хозяевами патогенных микроорганизмов и обеспечивающих размножение и существование их в природе, называется резервуаром возбудителя инфекции. Им могут быть кровососущие насекомые, клещи и грызуны.
Механизм передачи возбудителя инфекции
Эволюционно сложившая видовая приспособленность патогенного микроорганизма к перемещению от источника возбудителя инфекции к здоровому восприимчивому животному, что обеспечивает новые случаи заражения и непрерывность эпизоотического процесса. В механизме передачи различают фазы, способы, пути и факторы передачи возбудителя. Фазы:
Выделение возбудителя из организма;
Пребывание возбудителя во внешней среде;
Внедрение возбудителя в организм нового хозяина.
Фазы выделения и внедрения возбудителя – временные акты. Фаза выделения может быть связана с физиологическим процессом (дыхание, слюноотделение, дефекация, мочеиспускание), а может быть связана с патологическими явлениями (кашель, истечения из носа, рвота, аборт, понос, травмы). Внедрение патогенного микроба может быть осуществлено двумя путями: через полостные органы, сообщающиеся с внешней средой; через кожу и слизистые оболочки. Фаза пребывания возбудителя во внешней среде самая продолжительная и наиболее важная в механизме передачи. Во внешней среде возбудители не только сохраняются, но и вместе с объектами неживой и живой природы могут перемещаться и распространяться на большие территории. Элементы внешней среды, участвующие в передаче возбудителя инфекции, но не являющиеся естественной средой их обитания, называют факторами передачи возбудителя инфекции. Перенос возбудителей может быть механическим, если между возбудителем и переносчиком нет биологической связи, и специфическим, если возбудитель размножается в переносчике. В этом случае биологический переносчик является и резервуаром возбудителя.
Существуют монотропные патогенные микроорганизмы, паразитирующие только в одной ткани или органе. Политропные – во многих органах и тканях (возбудитель туберкулеза, ящура, чумы свиней). Пантропные – во всех органах и тканях.
При инфекционных болезнях животных в основном различают 4 способа передачи возбудителя инфекции:
Контактный. Осуществляется при прямом (непосредственном) или непрямом (посредственном, через предметы ухода) соприкосновении больного животного со здоровым. Кожа и слизистые оболочки глаз, носа, пищеварительной и половой системы. Прямой (непосредственный) контакт происходит при бешенстве (укус), кампилобактериозе (случка), оспе, ящуре, трихофитии (соприкосновение).Воздушный. Через воздух в виде аэрозоля жидких или твердых частиц, содержащих патогенный микроорганизм. При болезнях, сопровождающихся поражением органов дыхания, во время чихания, фырканья, кашля животных. Возможен и пылевой путь распространения, при вдыхании зараженной пыли (сибирская язва, оспа, микозы, туберкулез). Чаще такой путь наблюдается в стойловый период, при скученном и безвыгульном содержании животных.
Кормовой и водный. Наблюдают при большинстве инфекционных болезней (алиментарные инфекции).
Трансмиссивный (при укусах кровососущими насекомыми). Характеризуется участием переносчиков, прежде всего кровососущих, членистоногих.
Механизм передачи возбудителя инфекции, связанной с выходом возбудителя во внешнюю среду, называют горизонтальным. Горизонтальный путь свойственен большинству инфекционных болезней, при этом факторы внешней среды играют важную роль. Вертикальный путь – передача возбудителя от родителей потомству без выхода его во внешнюю среду. Реализуется через генетический аппарат, плаценту, трансовариально, с молозивом или молоком, при травмах родовых путей. Характерен для инфекций, вызываемых внутриклеточными паразитами, возбудители которых слабо устойчивы и быстро погибают вне организма.
Восприимчивые животные
Восприимчивость организма – способность животного заражаться инфекционной болезнью. С эпизоотологической точки зрения важна не столько индивидуальная, сколько групповая восприимчивость (восприимчивость популяции), которая может существенно варьировать. К ящуру, чуме КРС, сибирской язве соответствующие виды животных восприимчивы почти на 100%, но при большинстве болезней восприимчивость ниже, и часть животных не заболевает. Это связано с иммунной неоднородностью популяции. Соотношение в стаде восприимчивых и иммунных животных к конкретному возбудителю инфекции называют иммунологической структурой стада. Она зависит от многих факторов и условий, которые можно разделить на 2 группы. Неспецифические: порода, возраст, пол, физиологическое состояние, кормление, эксплуатация, стрессы, сопутствующие заболевания. Специфические: предшествующее естественное переболевание поголовья или искусственная иммунизация, в результате которых возникает специфическая устойчивость или иммунитет к конкретному возбудителю инфекции.
Степень восприимчивости в эпизоотологии обозначается индексом контагиозности (%). Он показывает среднее число заболевших из каждых 100 животных неблагополучного стада, имевших контакт с больными. При чуме или ящуре – 100%, при листериозе – 20-30%.
Вторичные (посредственные) движущие силы ЭП
Влияют на эпизоотический процесс не сами по себе, а через элементы эпизоотической цепи. Возникновение и распространение инфекционных болезней будет зависеть от всей совокупности ветеринарно-биологических, природных и социально-экономических условий.
Природно-географические факторы
Природно-климатические условия (температура, влажность воздуха, осадки, растительность, солнечная радиация) различных регионов не одинаковы и по-разному влияют на возбудителя инфекции и на животный организм. Кроме того, природные условия определяют видовой состав домашних и диких животных, их ареал, наличие переносчиков и т.д. Обусловливают географическую приуроченность некоторых инфекционных болезней, имеют решающие значение в формировании природных очагов трансмиссивных болезней.
Социально-экономические факторы
Условия воспроизводства, выращивания и эксплуатации животных, технология и организация производства, хозяйственно-экономические связи и ветеринарно-санитарная культура обслуживания животноводства. Тесно связаны с характером государственного и общественного строя страны, общим культурным уровнем населения, степенью развития сельского хозяйства, в частности животноводства, а также социальными потрясениями (война, голод, экономический кризис).

Интенсивность проявления эпизоотического процесса. Особенности эпизоотического процесса в условиях промышленных комплексов
Интенсивность проявления эпизоотического процесса
По степени интенсивности и широте распространения эпизоотический процесс характеризуют тремя формами: спорадия, эпизоотия и панзоотия. Спорадия - единичные случаи. Эпизоотия характеризуется достаточно широким распространением болезни на определенной территории. При эпизоотии определяют общий источник и механизм передачи эпизоотического процесса. Панзоотия – на целые страны и континенты. Энзоотия – характеризует наличие инфекционной болезни в определенной местности, отражает не интенсивность эпизоотического процесса, а приуроченность его к определенной местности.
Отмечают как сезонные, так и периодические колебания интенсивности. Сезонность эпизоотии проявляется в виде регулярных, повторяющихся на протяжении многих лет подъемов интенсивности эпизоотического процесса в определенные сезоны года. Её надо учитывать при возникновении противоэпизоотических мероприятий. Периодичность характеризуется подъемами и спадами эпизоотического процесса, повторяющимися с интервалами в несколько лет. Объясняется изменением численности популяции восприимчивых животных и их иммунологической структуры, а в некоторых случаях и сменой антигенных типов возбудителя.
Особенности эпизоотического процесса в хозяйствах промышленного типа
Большая концентрация поголовья на ограниченных площадях, интенсивная эксплуатация животных. Возможно массовое поражение респираторной и пищеварительной систем у животных, нарушение обмена веществ, снижение воспроизводительной функции. Респираторные и алиментарные болезни в таких хозяйствах выходят на первый план. Слабовирулентные штаммы отдельных возбудителей болезни при снижении специфической устойчивости животных могут самостоятельно вызывать острые вспышки конкретной инфекционной болезни. Так возникают ИРТ, ПГ-3, пастереллёз и другие заболевания. Может наблюдаться активизация условно патогенной микрофлоры и появление на этом фоне массовых ЖК, респираторных болезней бактериального, микоплазмозного и вирусного происхождения. Часто в таких хозяйствах болезни проявляются вяло, без выраженных клинических признаков (малые болезни). Диагностика затруднена, могут снижать экономическую эффективность на 20-30% и более. Наибольшую опасность для промышленного животноводства представляют смешанные инфекции и болезни, протекающие хронически, без выраженных признаков.
В таких хозяйствах также существуют болезни адаптации. При поступлении новых животных вносимый новый возбудитель может быстро распространяться на все поголовье. Профилактика болезней адаптации основывается на обеспечении стандартности животных в группе по возрасту, массе, происхождению, микробному пейзажу, состоянию здоровья и уровню продуктивности. Идеальным профилактическим мероприятием является одновременное заполнение и освобождение всего помещения или сектора по принципу «все пусто – все занято». В современных животноводческих комплексах длина стойла укорочена до 160, в сочетании с металлическими решетками она обусловливает распространение копытных болезней, в том числе и некробактериоз. Отказ от подстилки приводит к повышению сырости в помещениях, это способствует возникновению и распространению респираторных болезней молодняка, маститов у коров.
Эпизоотический процесс при таких инфекциях, как корона- и ротавирусная, колибактериозе, туберкулезе, бруцеллезе КРС, гемофилезном полисерозите, вирусном трансмиссивном гастроэнтерите, стал проявляться массово и более выражено.
При нарушении технологии содержания свиней по параметрам микроклимата, кормлению, перегруппировкам животных, возникают тяжелые вспышки сальмонеллёза. В условиях промышленных комплексов отмечено нарушение сложившегося микробного равновесия. Условно патогенная микрофлора (эшерихия коли, сальмонелла, кокковая микрофлора) стала доминирующей в патологии свиней. Этими фактами объясняется появление и широкое распространение на промышленных комплексах гемофилезных инфекций, колибактериоза, сальмонеллёза и дизентерии.
Чем крупнее животноводческий комплекс, тем выше заболеваемость животных туберкулёзом, бруцеллёзом. В таких хозяйствах затягивается выздоровление даже при применении современных эффективных схем вакцинации животных.
Профилактические мероприятия
Обеспечение животных оптимальными зоотехническими условиями содержания;
Обеспечение животных полноценными кормами хорошего качества;
Скармливание премиксов с лечебно-профилактической целью в определенные фазы производственного цикла с учетом ветеринарных показаний;
Обеспечение животных достаточным фронтом кормления.
Способствуют повышению резистентности организма и снижают воздействие стресс-факторов. + Необходимо проводить специфическую профилактику.

Биология мышевидных грызунов и их роль в распространении инфекции
В животноводческих помещениях у грызунов благоприятные условия гнездования и достаточная кормовая база. Они чрезвычайно быстро размножаются, так как половая зрелость у них наступает очень рано, продолжительность беременности очень короткая. В течение года серая крыса способна давать 4-8 пометов по 6-12 крысят в каждом. У мышей беременность 18-20 дней, в одном помете 8-10 мышат.
Главная опасность – в эпизоотическом и эпидемическом отношениях, так как являются источниками и переносчиками свыше 200 инфекционных заболеваний человека и животных. Крысы и мыши – основные резервуары возбудителя туляремии в природе, носители и распространители возбудителей лептоспироза, бруцеллеза, листериоза, ящура, болезни Ауески, сибирской язвы, рожи свиней, сальмонеллеза, вируса бешенства, возбудителя трихофитии, туберкулеза, чумы, трихинеллеза. Многими болезнями болеют сами, другие передают человеку и животным через клещей, блох и других паразитирующих на них насекомых. Ряд заболеваний грызуны могут переносить механически, загрязняя продукты питания человека и корма животных. В нашей стране около 140 видов грызунов. Наиболее вредные – крысы, мыши, хомяки, суслики.
Всеядны, чистоплотны, питаются избирательно, не едят порченые продукты. На животноводческих фермах обычно встречаются крысы, мыши домовые, полевки.
Крысы
Серая крыса (пасюк). Самая крупная крыса фауны России, длина тела 17-40 см без хвоста. Масса 140-500 г. Хвост всегда короче тела, до 19,5 см. Окраска меха серо-бурая, выделяются более длинные и блестящие остевые волосы. Молодые крысы почти серые, с возрастом в окраске усиливается рыжина. Изредка встречаются черные. Череп отличается от черепов других крыс почти прямыми теменными гребнями. Твердость зубов выше твердости стали. Распространена почти повсеместно, зимой живет в постройках, фермах, амбарах, подвалах. Летом уходит в поля, где роет норы. Размножается круглый год. Всеядная. При наличии сухой пищи и отсутствии воды погибает через двое суток, при наличии воды и отсутствии пищи через 3-5 суток.
Черная крыса. По размеру несколько меньше серой. Длина тела 15-22 см, масса 132-300 г. Хвост густо покрыт волосами, обычно он длиннее тела, до 28,5 см. Естественный полиморфизм окраски меха. Чаще всего встречается 2 варианта окраски. 1 вариант: верх тела темно- или черно-коричневый, с зеленоватым металлическим блеском остевых волос. На боках окраска светлеет. Брюшная сторона пепельно- или грязно-серая. 2 вариант: окраска верха тела как у серой крысы, но светлее и желтее. Брюшная сторона беловатая, иногда желтоватая. Чешуйчатый хвост равномерно окрашен сверху и снизу. Череп отличается от черепа серой крысы дугообразной изогнутостью теменных гребней. Заселяют главным образом поселки и города, прилегающие к морю, выбирают более сухие места, часто – чердаки.
Домовая мышь. Мелкий длиннохвостый грызун. Длина тела 6,5-9,5 см. Хвост составляет не менее 90% длины тела и покрыт кольцеобразно расположенными роговыми чешуйками и редкими короткими волосками. Вес 12-30 г. Уши округлые, сравнительно небольшие. Окраски преобладают темные, буровато-серые. Распространены повсеместно, заселяют жилые дома, склады, животноводческие помещения, сады, огороды, лесные посадки. Всеядна. Лакомая приманка – жареное сало. В зимний период может проникать в ульи, строить там гнезда, поедать пчел и мед. Питание состоит из того набора продуктов, до которых они способны добраться. Домовые мыши обычно не делают запасов корма.
Полевка европейская рыжая. Мелкий мышеобразный грызун. Длина тела 8-11,5 см. длина хвоста 3-6 см. Вес полевки 17-35 г. Окраска меха спины ржаво-коричневая, брюхо сероватое, хвост сверху темный, снизу беловатый, покрыт короткими редкими волосками.
Обыкновенная полевка. Грызун небольших размеров, тело 9-14 см, вес не больше 45 г. хвост = 30-40% от длины тела, до 5 см. Окраска меха на спине может варьировать от светло-бурой до темноватой серо-бурой, иногда с примесью коричнево-ржавых тонов. Распространена довольно широко, живет в полевых условиях. После сенокоса и уборки хлебов концентрируется в стогах и наметах.
В естественных условиях продолжительность жизни крыс, мышей, полевок более 3х лет, в условиях городов средняя продолжительность жизни 1 год.

Специфическая и неспецифическая устойчивость организма к инфекции. Факторы, влияющие на сопротивляемость организма заболеваниям
Иммунитет – состояние невосприимчивости организма к воздействию патогенных микробов, их токсинов и других чужеродных веществ биологической природы.
По происхождению иммунитет делят на 2 вида:
Врожденный (естественный, видовой, породный), свойственен животным определенного вида к определенному возбудителю и передается из поколения в поколение. Например, лошади никогда не болеют ящуром, КРС – сапом, собаки – чумой свиней, животные – сифилисом. В основе механизма врожденного иммунитета лежат: отсутствие в клетках организма рецепторов и субстратов, необходимых для адгезии и размножения возбудителя; наличие веществ, блокирующих размножение патогенных микробов.
Подразделяется на абсолютный и относительный. Абсолютный, если заболевание не удается вызвать ни при каких условиях никакими дозами заразного материала. Относительность врожденного иммунитета обычно проявляется при изменении условий содержания животных, снижающем их естественную резистентность, или при применении для заражения очень больших доз. Врожденной резистентностью в основном обладают взрослые животные, у новорожденных чаще отсутствует.
Приобретенный, специфический. Устойчивость только к определенному возбудителю болезни. Естественный и искусственный. Естественный: активный и пассивный. Искусственный так же. Активный естественный иммунитет образуется после естественного переболевания животного. Естественный пассивный – иммунитет новорожденных, за счет поступления плоду антител от матери через плаценту или после рождения с молозивом (колостральный). У птиц материнские антитела передаются с лецитиновой фракцией желтка (трансовариальный). Естественный иммунитет может сохраняться 1-2 года, но в некоторых случаях пожизненно. Естественный пассивный – от нескольких недель до нескольких месяцев. Искусственный активный – вакцинный, сохраняется от нескольких месяцев до 1го года и более. Пассивный искусственный – при введении иммунной сыворотки или глобулина, содержащих специфические антитела против определенного возбудителя. Можно создать при введении сыворотки от переболевших животных. Пассивный иммунитет не превышает 15 дней.
По направленности действия защитных механизмов организма на микроорганизмы или их продукты.
Антибактериальный иммунитет - защитные механизмы направлены против патогенного микроба, в результате предотвращается размножение и распространение микроба;
Противовирусный иммунитет обусловливается выработкой организмом противовирусных антител и механизмами клеточной защиты;
Антитоксический – в организме вырабатываются антитела, эффективно нейтрализующие токсины;
Иммунитет против протозойных и гельминтозных заболеваний.
Местный или локальный иммунитет, формируется без участия сывороточных антител. Доказано, что в иммунитете слизистой оболочки большое значение имеют секреторные антитела, относящиеся к иммуноглобулинам класса А.
Гуморальный иммунитет – защита обеспечивается сывороточными антителами. Клеточный (тканевый) - невосприимчивость обусловливается защитными функциями тканей за счет образования специфически реагирующих с возбудителем Т-лимфоцитов. Фагоцитарный иммунитет связан со специфическими сенсибилизированными (иммунными) фагоцитами.
После перенесенной болезни организм освобождается от возбудителя болезни, сохраняя невосприимчивость. Такой иммунитет называется стерильным. При некоторых инфекционных заболеваниях иммунитет сохраняется до тех пор, пока в организме есть возбудитель болезни. Такой иммунитет называют нестерильным (инфекционным). При туберкулезе, бруцеллезе, сапе.
Неспецифические и специфические факторы защиты организма
Неспецифические факторы
Действуют против многих патогенных агентов одновременно. Они универсальны и немедленны. Именно неспецифические защитные механизмы вступают в качестве первого защитного барьера на пути внедрения инфекционного агента.
К неспецифическим факторам защиты организма относятся:
Защитные свойства кожи и слизистых;
Защитные функции нормальной микрофлоры;
Воспаление и фагоцитоз, барьерная функция лимфоидной системы;
Гуморальные факторы (лизоцим, комплемент, нормальные антитела и др.);
Физиологические факторы (температура, метаболизм обменных процессов);
Генетическая и фенотипическая реактивность клеток и тканей.
Специфические факторы
Направлены против определенного вида или серотипа микроба, обладают более сильными свойствами, но возникают только после первого контакта животного организма с данными микробами.
На протяжении латентного периода единственными сдерживающими факторами являются неспецифические.
5 форм специфических реакций, из которых складывается иммунологическая реактивность.
Выработка специфических антител;
Иммунологическая память;
Иммунологическая толерантность;
Гиперчувствительность немедленного типа;
Гиперчувствительность замедленного типа.
Принципы формирования иммунного ответа
При бактериальных инфекциях
Вначале появляются антитела, относящиеся к иммуноглобулину M. Спустя несколько дней появляются антитела, относящиеся к Ig G и A. Связываются с бактериальной клеткой и в присутствии комплемента вызывают бактериолизис. Нейтрализуют также токсины, вырабатываемые бактериями, также обсонируют бактерии и способствуют усилению фагоцитарной активности. При остром течении инфекционного процесса выработка антител в организме запаздывает. Когда патогенные организмы размножаются внутриклеточно, они уничтожаются реакциями клеточного иммунитета: Т-киллерами или активизированными макрофагами. Клеточный иммунитет наблюдается, когда имеется незавершенный фагоцитоз бактерий. В этом случае уничтожатся фагоциты с микробами внутри. Их уничтожают сенсибилизированные Т-киллеры. Одновременно они выделяют лимфокины, которые активизируют в очаге воспаления макрофаги. Последние приобретают способность уничтожать микробы.
При многих бактериальных инфекциях, особенно с хроническим течением болезни, формируется гиперчувствительность замедленного типа, где главную защитную роль выполняют сенсибилизированные Т-лимфоциты и лимфокины.
Принцип формирования иммунного ответа при вирусных инфекциях
Иммунитет при вирусных инфекциях обеспечивается антителами и сенсибилизированными Т-лимфоцитами. Вирусы, распространяющиеся гематогенно, могут быть обезврежены и удалены механизмами гуморального иммунитета. Группе защитных антител принадлежат только вируснейтрализующие антитела, подавляющие способность вирусов к репродукции благодаря блокированию первых этапов взаимодействия вируса с чувствительными клетками. Эти антитела нейтрализуют и токсические свойства вируса. Стабильность комплекса вирус-антитело зависит от различий чувствительности вируса к антителам, авидности их, температуры и времени контакта. Часто соединение вируса с антителами носит обратимый характер. Антитела не оказывают влияния на вирус, находящийся внутри зараженной клетки. В этом случае в организме на вирусы, находящиеся в зараженной клетке, образуются цитотоксические Т-лимфоциты, способные лизировать только клетки, зараженные вирусом. Особая роль принадлежит клеточному иммунитету.
Кроме сенсибилизированных Т-лимфоцитов при внедрении вируса в клетку встречаются К-киллеры и природные киллеры, особенно при вирусных болезнях, отличающихся коротким инкубационным периодом. Существуют вирусы, которые, несмотря на иммунный ответ, пожизненно персистируют в организме хозяина.

Инфекция, формы инфекции, инфекционная болезнь
Infectio – заражаю. Это состояние зараженности, обусловленное взаимодействием животного организма и патогенного микроба. Размножение внедрившихся микробов вызывает в организме комплекс защитно-приспособительных реакций, являющихся ответом на специфическое патогенное действие микроба. Реакции выражаются в биохимических, морфологических и функциональных изменениях, они направлены на сохранение гомеостаза.
Состояние инфекции как всякого биологического процесса динамично. Динамику реакций взаимодействия между микро- и макроорганизмами называют инфекционным процессом. Инфекционный процесс с одной стороны включает в себя внедрение, размножение и распространение патогенного микроба в организме, а с другой – реакцию организма на это действие. Патогенное действие возбудителя инфекции на организм животного может быть неодинаковым. Это зависит от количества и качества специфического возбудителя, возможности его проникновения в организм восприимчивого животного, условий внутренней и внешней среды. Формы инфекции:
По характеру взаимодействия возбудителя болезни и животного организма:
Инфекционная болезнь. Характеризуется внешними признаками нарушения нормальной жизнедеятельности животного организма, функциональными расстройствами и морфологическим повреждением тканей. Инфекционная болезнь является явной инфекцией в том случае, если проявляются определенные клинические признаки болезни. Нередко инфекционная болезнь клинически не проявляется (скрытая, бессимптомная, латентная, инаппаратная). Животных со скрытой инфекцией выявляют с помощью бактериологического, патоморфологического и иммунологического исследований.
Микробоносительство, не связанное с предшествующим переболеванием животного. При этой форме инфекции возбудитель находится в органах и тканях клинически здорового животного, но не вызывает патологического состояния и иммунологической перестройки организма. Равновесие между микро- и макроорганизмом поддерживается естественными факторами резистентности. Устанавливают эту форму только посредством микробиологического исследования. При определенной степени неспецифической резистентности животные могут быть здоровыми носителями возбудителей сальмонеллеза, пастереллёза, рожи свиней, мыта лошадей и т.д.
Иммунизирующая субинфекция. Состояние, когда патогенные микробы проникают в организм животного в небольших дозах и неоднократно, вызывают иммунобиологические реакции, но сами при этом погибают. У таких животных не выявляют функциональных расстройств, а после убоя не обнаруживают патологических изменений в органах и тканях. Таких животных выявляют с помощью серологических и аллергических исследований. Примером иммунизирующей субинфекции является то, что лошади старше 5 лет не болеют мытом, а КРС старше 4 лет не болеют эмкаром.
Инфекционная болезнь
Имеет ряд особенностей, отличающих её от болезней неинфекционного характера:
Им свойственна специфичность.
Имеют тенденцию к широкому распространению.
Им свойственна стадийность (периодичность).
Контагиозность (заразность).
В зараженном организме происходит иммунная перестройка, чего не бывает при неинфекционных заболеваниях.
При разных болезнях инкубационный период неодинаков, от нескольких часов до нескольких месяцев, в среднем колеблется от 1 до 2 недель. Неодинаковая длительность определяется различными причинами: количество и вирулентность возбудителя; ворота инфекции; резистентность организма заразившегося животного; факторы внешней среды.
Во время инкубационного периода происходит размножение микробов, при некоторых болезнях также происходит выделение возбудителя во внешнюю среду. Поэтому продолжительность инкубационного периода необходимо учитывать при организации мер борьбы с инфекционной болезнью.
Продромальный период (период предвестников болезни). Характеризуется первыми, не всегда специфическими для данной болезни симптомами, повышением температуры тела, слабостью, угнетением, потерей аппетита. Продолжительность от нескольких часов до 1-2 дней.
Период полного клинического развития болезни. В данный период проявляются основные, характерные для данной инфекционной болезни клинические признаки. При благоприятном течении этот период сменяется периодом выздоровления (реконвалесценции). В этот период постепенно восстанавливаются физиологические функции организма. Также может быть летальный исход. При выздоровлении организм животного иногда не полностью освобождается от возбудителя (микробоносительство реконвалесцентами).
Течение болезни:
Сверхострое (молниеносное). Характеризуется гибелью животного в течение нескольких часов, при этом клинические признаки чаще всего не успевают развиться;
Острое. Болезнь продолжается 1-7 дней, при этом наблюдают типичные признаки болезни;
Подострое. Болезнь длится дольше, до нескольких недель, клинические признаки характерны, но выражены слабее, чем при остром течении;
Хроническое. Длится недели, месяцы. Годы с неясными слабо выраженными признаками, временами без них. Для такого течения характерны ремиссии (стадии покоя) и рецидивы (обострения);
Абортивное характеризуется внезапным прерыванием типичной формы заболевания с наступлением выздоровления или без него.Злокачественное – прогноз неблагоприятный, исход обычно летальный;
Доброкачественное – прогноз благоприятный, заканчивается обычно выздоровлением.
Возможен переход одного вида течения в другое.
Форма клинического проявления: типичная или атипичная; может быть кишечной, легочной, нервной, кожной, мышечной, суставной, глазной и т.д. При типичной форме болезни наблюдается комплекс признаков, характерных для данной болезни, при атипичной форме наблюдают отклонение от типичных признаков.

Ветеринарно-санитарные требования к строительству утильзаводов и скотомогильников
Утилизация проводится на утилизационных заводах, они выполняют важную функцию по охране окружающей среды. Деятельность направлена на поддержание ветеринарно-санитарного благополучия в обслуживаемой зоне.
При строительстве утильзаводов должны соблюдаться следующие требования:
Строительство заводов осуществляется по типовым проектам;
Для строительства завода выбирают ровное сухое возвышенное место;
Грунтовые воды должны находиться от поверхности земли на 2,5-3 метра;
Заводы должны находиться на расстоянии не менее 1 км от животноводческих помещений и 2 км от магистралей;
Учитывают направление господствующего ветра, заводы строятся с подветренной стороны;
Сплошной забор высотой до 2 м;
Вход посторонним запрещен;
Вдоль забора должны быть высажены зеленые насаждения шириной до 3 м;
У главного въезда на завод на ширину ворот должен быть дезбарьер;
Подъездные пути и территория завода должны быть асфальтированы;
Территория завода делится на 2 изолированные зоны: неблагополучную и благополучную;
Пол в производственных помещениях должен быть непроницаемым для жидкости, его либо асфальтируют, либо цементируют. Стены помещений должны быть покрыты плиткой;
Работники должны обеспечиваться спецодеждой и обувью.
Скотомогильники
Высота 2 метра – яма - слой земли, на которой лежал труп, насыпь – 0,5 м.
Ведут учёт всех скотомогильников и устанавливают их эпизоотическую опасность. 2 категории: скотомогильники без сибиреязвенных трупов и скотомогильники, где есть сибиреязвенные трупы или нет точных сведений об их отсутствии.
На территории после их закрытия осенью выжигают травяную растительность и высаживают деревья хвойных пород. Дезинфицируют почву (ОКЭБМ – окись этилена и бромистого метила или БМ – бромистый метил: 1 кг/м2). Температура почвы не ниже 5 ºС и влажности от 1 до 33%. После внесения почва прикрывается полиамидной плёнкой. ОКЭБМ до 5 суток, БМ до 10 суток.
После обносят изгородью и ставят табличку: сибиреязвенный скотомогильник закрыт.
Оформляются учёные карточки у главного вет. инспектора района в вет. отделе и у владельца земли.

ВС надзор за уборкой, уничтожением и утилизацией трупов животных
Обезвреживание трупов животных: утилизация (утильзавод, утильустановка) или уничтожение (сжигание, биотермическая яма, скотомогильник).
Утилизация (лат. «полезный») – дословный перевод «потребить с пользой». При утилизации получают ценные продукты: шкура, мясокостная мука, животный жир, клей, щетина, рога (для изготовления пуговиц, гребешков, украшений). Утилизация проводится на утилизационных заводах, они выполняют важную функцию по охране окружающей среды. Деятельность направлена на поддержание ветеринарно-санитарного благополучия в обслуживаемой зоне.
На заводе выполняются следующие операции:
Прием сырья. На утильзавод принимают все трупы независимо от причины падежа при наличии сопроводительного документа, в котором указывают либо причину падежа животного, либо предположительный диагноз. При приемке все трупы биркуют и регистрируют в специальном журнале. Все трупы подвергают исследованию на сибирскую язву и другие споровые инфекции. Проводят вскрытие и патологоанатомическое исследование трупов;
Сортировка сырья. По результатам полученных лабораторных исследований и патологоанатомических изменений трупы делят на 2 группы: павшие от неспоровых инфекций и от споровых, в том числе сибирской язвы;Обезвреживание трупов. Трупы из 1й группы обезвреживают в горизонтальных вакуумных котлах при температуре 130 ºС и давлении в 3 атм. в течение 30-60 минут. Трупы из 2 группы сжигают в трупосжигательных печах либо подвергают обработке паром подавлением при температуре 140-144 ºС и давлении в 4 атм. Все эти три операции проводятся в неблагополучной зоне.
В благополучной зоне производят мясокостную муку и другие продукты утилизации, там находится административное здание, столовая, комната отдыха.
Сточные воды обезвреживаются в автоклаве при температуре 120 ºС в течение 20-30 минут, затем выпускаются в общую сеть.
На заводе проводится дезинфекция, в неблагополучной зоне через каждые 5 дней, можно каждый день. В благополучной зоне – не реже 1раза в месяц.
Уничтожение трупов
Метод сжигания. Сжигать трупы можно просто на кострах, но труп горит долго. Наиболее удобным методом является сжигание в специальных ямах (в виде креста, с грядой, двойная яма). Либо сжигают трупы на трупосжигательных печах - более гигиеничный метод. Используют стационарные трупосжигательные печи (при вет. станциях, лабораториях, утильзаводах). Источником энергии является газ. За 6 часов можно сжечь до 300 кг сырья. Передвижные трупосжигательные печи небольших размеров, используются на отгонных пастбищах.
Уничтожение в биотермических ямах (ямы Беккари). Применяются для обезвреживания трупов, павших от неспоровой инфекции. Строительство биотермических ям проводится с разрешения санэпидстанции и ветеринарного управления. При строительстве есть требования:
Биотермические ямы строятся на специально отведенных площадках, желательно в лесу. Место должно быть сухим, возвышенным, с низким стоянием грунтовых вод (2,5-3 м);
Яму роют глубиной 10 м, диаметром 3 м. над ямой обязательно строят сарай или навес. Вокруг ямы должен быть забор высотой до 2 м;
Стены ямы выкладывают кирпичом или цементируют, раньше – из бревен. Стены выводят выше уровня земли на 40-70 см. Делают две крышки, обе закрываются на замок. Делают вытяжной канал, который выводят выше крыши навеса для вентиляции ямы.
На территории биотермической ямы запрещается выпасать животных и косить траву.
Трупы разлагаются под действием развивающихся термофильных бактерий, температура поднимается до 65-70 ºС. Обеззараживание трупов достигается в течение 2-3 мес. Яму загружают до уровня 1,5 м ниже поверхности земли. Для полного разложения трупов и уничтожения патогенных микроорганизмов яму закрывают на 4-5 мес. Все действующие ямы состоят на учете, на них заводятся ветеринарно-санитарные карточки.

Противоэпизоотические мероприятия
Система мер, направленных на предупреждение инфекционных болезней и борьбу с ними. Меры:
По предупреждению заноса возбудителей заразных болезней животных на территорию нашей страны;
По предупреждению возникновения и распространения инфекционных болезней в животноводческих хозяйствах;
По осуществлению быстрой ликвидации возникших эпизоотических очагов;
По предупреждению заражения людей возбудителями зооантропонозов.
Противоэпизоотические мероприятия включают:
Изучение ветеринарно-санитарной и эпизоотической обстановки на всей территории страны и за рубежом;
Ветеринарно-санитарные и карантинные мероприятия, проводимые на пограничных ветеринарных пунктах;
Наблюдение за территориями размещения животных;
Своевременное обследование неблагополучных пунктов, эпизоотических очагов, природных очагов возбудителей инфекционных заболеваний;
Оценку эпизоотического состояния хозяйства и эпизоотическое прогнозирование;
Постоянное проведение профилактических мероприятий, подразделяющихся на общие и специальные;
Постоянное проведение оздоровительных мероприятий;
Своевременная изоляция, обезвреживание и ликвидация источников возбудителя инфекции;
Устранение и обезвреживание факторов передачи возбудителя инфекции;
Повышение общей и специфической устойчивости животных.
Из всех звеньев противоэпизоотических мероприятий главное значение имеет профилактика. Заболевание легче предупредить, чем ликвидировать.
Основные принципы профилактических противоэпизоотических мероприятий
Плановость – составляются планы мероприятий на месяц, 1, 5, 20 лет и др.;
Комплексность – мероприятия должны быть направлены одновременно на 3 звена эпизоотической цепи;
Выбор ведущего звена. Зависит от особенностей течения каждого конкретного инфекционного заболевания;
Демократичность – планирование профилактических мероприятий осуществляется снизу вверх.
Профилактические противоэпизоотические мероприятия
Комплекс мер, направленных на предупреждение возникновения инфекционных болезней в хозяйстве и в целом по стране. Профилактика инфекционных болезней осуществляется поэтапно.
1 этап: охрана границ страны от заноса инфекционных заболеваний из других стран.
2 этап: ВС надзор за передвижением животных и за переработкой сырья животного происхождения;
3 этап: защита животноводческих комплексов от заноса инфекционных заболеваний из других, неблагополучных, хозяйств. Для этого комплектование хозяйства нужно проводить только из благополучных мест; вновь завезенных животных карантинировать в течение 30 дней, во время карантина проводить все необходимые диагностические исследования.
Профилактические противоэпизоотические мероприятия делятся на общие и на специальные.
Общие
Карантинирование вновь завозимых животных в течение 30 дней;
Контроль состояния пастбищ и водоемов;
Просветительная работа среди работников животноводства;
Диспансеризация животных (не менее 2 раз в год). При диспансеризации выявляют предрасполагающие факторы, проводят своевременное лечение и предупреждают дальнейшее развитие инфекции;
Контроль строительства животноводческих комплексов;
Наличие и распределение ветеринарных объектов на территории животноводческих помещений.
Специальные
Система мер, направленных на предупреждение конкретной инфекционной болезни. Эти меры состоят из плановых профилактических или вынужденных прививок животных, включая также диагностические исследования, лечебно-профилактические, иммунопрофилактические, а также дезинфекцию, дезинсекцию и дератизацию.
Вакцинация животных – создание иммунитета с помощью вакцин, сывороток и глобулинов. Вакцинации подразделяются на предохранительные и вынужденные. Они бывают активные (с помощью вакцин, ей подвергают только здоровых животных) и пассивные (с помощью глобулинов и сывороток, когда животные относятся к группе подозрительных и подозреваемых по заражению; через 2 недели после введения сыворотки можно проводить активную вакцинацию). Вакцинацию можно проводить энтеральным путем (через рот, широко применяется при вакцинации диких хищников против бешенства, в птицеводстве) и парентеральным (подкожно, внутримышечно, аэрозольно).
Оздоровительные противоэпизоотические мероприятия
Комплекс мер, направленных на оздоровление хозяйства. Их проводят в неблагополучных хозяйствах. Характер проводимых оздоровительных мероприятий зависит от особенностей возбудителя болезни и конкретных условий. Мероприятия, направленные на 1 звено: выявление и обезвреживание источника инфекционных болезней. При одних заболеваний источник возбудителя инфекции уничтожается, при других – изолируется и подвергается лечению, третьих – отправляется на мясо. Мероприятия, направленные на 2 звено: дезинфекция, дезинсекция, дератизация, обеззараживание кормов, уничтожение и утилизация трупов, обеззараживание продукции животноводства, утилизация навоза. Мероприятия, направленные на 3 звено: улучшают условия кормления и содержания, проводят иммунизацию животных, также проводят иммунизацию в частном секторе.
Оздоровительные мероприятия проводятся 2 путями:
Полная замена неблагополучного стада;
Метод постепенной замены стада, т.е. удаление из стада положительно реагирующих животных при различных исследованиях.
На неблагополучные хозяйства при возникновении заболевания накладывают карантин или ограничения.
Карантин накладывается в случае возникновения заболевания, характеризующегося широким распространением, например, сибирская язва, ящур, чума свиней и т.д. При наложении карантина обязательно определяют границы эпизоотического очага, неблагополучного пункта и угрожаемую зону, и проводят конкретные мероприятия. Ограничения накладываются при инфекционных заболеваниях, при которых менее высокая степень разобщенности животных.
Сроки наложения карантина или ограничений зависят от продолжительности инкубационного периода, микробовыделения или вирусовыделения. Чем длиннее этот срок, тем более длительный срок карантина или ограничений. Для снятия карантина или ограничения учитывают последний случай выздоровления или последний случай падежа животного, если проводилась вакцинация – то последний срок выработки иммунитета. Перед снятием карантина или ограничения проводится весь комплекс ветеринарно-санитарных мероприятий.
Виды эпизоотических очагов, структура очага болезни
Место пребывания источника возбудителя инфекции среди популяции животных на территории, на которой в данное время возможна его передача восприимчивых животных и распространение болезни. Эпизоотический очаг – место взаимодействия всех 3 звеньев эпизоотической цепи.
Это элементарная ячейка эпизоотического процесса, его можно отнести ко всем инфекционным болезням независимо от степени их распространения. Эпизоотический очаг может быть различным по размеру, то есть числу заболевших животных – от маленького личного подворья с одним больным животным до крупного животноводческого комплекса с прилегающими пастбищами и территориями.
Структура эпизоотического очага
Эпизоотический очаг состоит их неблагополучного пункта и угрожаемой зоны.
Неблагополучный пункт – населенный пункт или животноводческий объект, на территории которого обнаружен эпизоотический очаг. Неблагополучным пунктом могут быть объявлены район города или целый город, село, хозяйство, ферма и т.д. Границы неблагополучного пункта устанавливают в зависимости от изолированности неблагополучного пункта от других пунктов и характера развития болезни.
Угрожаемая зона – территория вокруг неблагополучного пункта, в пределах которой возможно распространение болезни. Угрожаемую зону определяют местные ветеринарные органы с учетом хозяйственных связей, географических, климатических и природных условий. Угрожаемую зону обычно определяют при особо опасных инфекционных болезнях, например, при ящуре, сибирской язве, бешенстве, африканской чуме свиней, чуме КРС. Проводятся мероприятия в самом эпизоотическом очаге, они делятся на мероприятия в угрожаемой зоне и в неблагополучном пункте.
Ликвидация эпизоотического очага состоит в обезвреживании источника возбудителя инфекции, обеззараживании объектов внешней среды и выключении из эпизоотической цепи восприимчивых животных. Эпизоотический очаг считается действующим, пока сохраняется опасность дальнейшего распространения болезни.
Виды эпизоотических очагов:
Свежий эпизоотический очаг. Недавно возникшие эпизоотические очаги вследствие заноса возбудителя к восприимчивым животным, в которых ещё нарастает число новых случаев болезни. Соответственно, нарастает опасность дальнейшего распространения болезни из таких очагов.
Затухающий эпизоотический очаг. Характеризуется постепенным или резким снижением числа случаев выделения больных животных в результате проведения противоэпизоотических мероприятий или вследствие естественного процесса перезаражения и переболевания большей части имеющегося поголовья. Сокращение числа активных источников возбудителя снижает опасность возникновения болезни.
Стационарный эпизоотический очаг. Стационарными считаются очаги, в которых вспышки болезни повторяются или могут повторяться через различные промежутки времени по причине постоянного сохранения условий, обеспечивающих потенциальную возможность их возникновения. Сюда относится наличие микробоносителей в стаде, наличие мышевидных грызунов и длительное сохранение некоторых возбудителей во внешней среде.
Природный эпизоотический очаг. Природными эпизоотическими очагами считают территории, на которых возбудители определенных инфекций циркулируют среди постоянно обитающих здесь диких животных. Известны природные очаги туляремии, лептоспироза, листериоза, бешенства. Природная очаговость означает существование на определенных территориях стойких очагов болезни, которые эволюционно возникли независимо от человека и его хозяйственной деятельности. Было доказано, что возбудители ряда опасных болезней переносятся кровососущими членистоногими и циркулируют среди диких позвоночных на необжитых территориях. Это явление получило название природной очаговости трансмиссивных болезней. Природная очаговость свойственна также болезням, передающимся контактным путем (бешенство), алиментарным путем (лептоспироз). Природные очаги возникают и в результате хозяйственной деятельности человека, когда возбудители от домашних животных передаются диким. К многим природноочаговым болезням восприимчив человек: клещевой цепной тиф, ку-лихорадка, клещевой энцефалит, бешенство, орнитоз, ящур, туляремия, лептоспироз, псевдотуберкулез, листериоз, сальмонеллез и др.
Структура природного очага болезни
Отдельным природным очагом принято называть наименьшую территорию, в пределах которой возбудитель болезни может неопределенно долгое время циркулировать без дополнительного заноса извне.
Выделяют 3 части очага:
Участок стойкого неблагополучия = ядра очагов. Здесь условия наиболее благоприятны для поддержания непрерывности эпизоотических цепей. Отсюда при подъемах заболеваемости возбудитель попадает на участок временного выноса. Очень важно найти ядро очага и обезвредить;
Участок временного выноса возбудителя;
Участок постоянного благополучия.

Закономерности развития эпизоотического процесса и стадийность эпизоотий
Основное внутреннее противоречие эпизоотического процесса
Эпизоотический процесс может продолжаться бесконечно долго, если существуют и взаимодействуют все 3 звена эпизоотической цепи. Звенья эпизоотической цепи обусловливают не только возникновение, но и дальнейшее развитие эпизоотического процесса, т.е. служат его движущими силами. Для движущих сил эпизоотического процесса характерны сложные взаимоотношения. Зараженные животные, инфицируя внешнюю среду, создают предпосылки для последующей реализации механизма передачи возбудителя и увеличения числа новых источников инфекции. В результате массового перезаражения часть животных в естественных условиях погибает, а у оставшихся в живых формируется постинфекционных популяционный иммунитет, который по закону обратной связи снижает активность механизма передачи. Это ограничивает дальнейшее распространение или даже прерывает эпизоотический процесс на определенной территории. Основное внутреннее противоречие эпизоотического процесса заключается в том, что взаимодействие движущих сил его является одновременно обязательным условием возникновения и причиной ослабления или даже прерывания эпизоотического процесса на определенной территории. В связи с этим противоречием эпизоотический процесс при стихийно возникающих эпизоотиях проявляется стадийно в виде возникновения, распространения и угасания.
Стадии эпизоотии
Межэпизоотическая стадия (стадия затишья). Это отрезок времени между двумя эпизоотическими волнами. Характеризуется единичными случаями болезни, преобладает микробоносительство и бессимптомная инфекция. У многих животных ещё сохраняется иммунитет, но число восприимчивых животных постепенно нарастает.
Предэпизоотическая стадия. Характеризуется нарастанием числа неиммунных животных. Сюда относится вновь родившийся молодняк, животные, вновь поступающие в группу, и животные, утратившие иммунитет со временем. На этой стадии увеличивается число заболевших животных, и бессимптомная инфекция переходит в клиническую.
Стадия развития болезни. Характеризуется дальнейшим увеличением заболеваемости, высокой восприимчивостью животных, типичными формами проявления инфекции, острым и сверхострым течением, началом формирования группового иммунитета.
Стадия максимального подъема. Характеризуется высокой восприимчивостью животных, массовым поражением, типичными формами болезни, острым и подострым течением. За счет формирования иммунитета и переболевания части животных в дальнейшем рост заболеваемости прекращается, наблюдается динамическое равновесие между заболевающими и выздоравливающими.
Стадия угасания эпизоотии. Характеризуется уменьшением числа новых случаев заболеваний животных, значительно нарастает число иммунных животных, нарушается механизм передачи возбудителя инфекции. В этот период преобладают стертые формы (признаки) болезни, подострое и хроническое течение, абортивная форма.
Постэпизоотическая стадия. Характеризуется максимальным групповым иммунитетом. Болезнь полностью прекращается до новой эпизоотической волны. Часть животных являются микробоносителями или переболевают бессимптомно.
При вмешательстве человека, проведении противоэпизоотических мероприятий на любой стадии можно прервать эпизоотическую цепь.

Дезинфекция и её виды, физический и биологический методы дезинфекции
Это способ обеззараживания объектов внешней среды, направленный на уничтожение в них патогенных микроорганизмов. Воздействуя на возбудителей инфекционных болезней, дезинфекция исключает 2 звено эпизоотической цепи – механизм передачи возбудителя инфекции. В комплексе противоэпизоотических мероприятий дезинфекция – обязательная мера в профилактике и оздоровлении хозяйств от любой инфекционной болезни.
Виды дезинфекции
Профилактическая:
Предпусковая;
Технологическая;
Вынужденная:
Текущая;
Заключительная.
Профилактическую дезинфекцию проводят в благополучных хозяйствах с целью предупреждения возникновения инфекционных болезней. Профилактическая дезинфекция снижает общую микробную обсемененность помещений и препятствует накоплению и распространению возбудителей инфекции в окружающей внешней среде. Предпусковая профилактическая дезинфекция проводится после завершения строительства объекта накануне ввода в помещение животных или накануне завоза кормов, если это складские помещения. Технологическая профилактическая дезинфекция проводится в процессе эксплуатации ферм. На мелких животноводческих фермах её проводят 2 раза в год. Весной, после выгона животных на пастбища, и осенью, перед постановкой на стойловое содержание. В откормочных хозяйствах проводится после каждой сдачи группы животных на убой. В родильных отделениях, свинарниках-маточниках, телятниках-профилакториях дезинфекция проводится не реже 1 раза в месяц. Стойла родильных отделений, клетки для телят дезинфицируют перед постановкой в них животных, а также после их освобождения. Эту дезинфекцию также проводят после массовых эпизоотических мероприятий, например, туберкулинизации, взятия крови, вакцинации. Также проводится в местах массового скопления животных: на выставках, ярмарках, базарах. Проводят не менее 2 раз в год на предприятиях по заготовке, хранению, переработке животного сырья, на скотобойных предприятиях, в холодильниках. В крупных хозяйствах промышленного типа сроки и кратность проведения профилактической технологической дезинфекции отдельных объектов и секторов определяются циклограммой их использования.
Вынужденная дезинфекция проводится при возникновении среди животных инфекционных болезней. Текущая дезинфекция проводится систематически со времени появления в хозяйстве первого случая заболевания и проводится всякий раз при обнаружении вновь заболевшего животного. Также проводится в сроки, предусмотренные инструкцией по борьбе с данным заболеванием. Текущая дезинфекция направлена на уничтожение возбудителя конкретной болезни, выделяемого больными животными и микробоносителями в течение всего неблагополучного периода. Проводят в помещениях с подозреваемыми в заражении животными и в изоляторах с явно больными животными. Заключительная дезинфекция проводится перед снятием ограничений или карантина с неблагополучного хозяйства. При заключительной дезинфекции обеззараживают все помещения, территорию, транспортные средства, инвентарь, одежду, навоз. Особое внимание уделяют дезинфекции пола и почвы под полом. При заключительной дезинфекции деревянный настил снимают, непригодные доски сжигают, остальные 2-3 раза орошают дезраствором, высушивают, снова дезинфицируют, высушивают, обстругивают. Верхний слой почвы под полом снимают и обеззараживают. Оставшийся грунт орошают 2% раствором формальдегида в расчете 2 литра на каждый кв. м. и перекапывают на глубину 20-25 см., затем прикапывают и засыпают свежей землей.
Физический метод дезинфекции
Механическая очистка помещений, высушивание, лучистая энергия, использование высоких температур, использование токов высокой частоты, ультразвук. При механической очистке возбудитель удаляется с навозом, пылью, остатками корма, подстилкой, при вентиляции и проветривании помещений. Лучистая энергия. Из естественных источников – солнечные лучи. Особенно чувствительны к солнечной энергии вегетативные формы возбудителей. Споры тоже погибают, но через более длительное время. Также используют искусственные источники УФ излучения. Широко используют бактерицидные лампы (БУВ-15, БУВ-60, БУВ-60-П, БУВ-30-П), облучатели (Н-60, П-60). Высушивание неблагоприятно влияет на жизнедеятельность микроорганизмов. Применяют при обеззараживании кож, шерсти, заболоченных участков. Высокие температуры широко используют для дезинфекции в лабораториях, их действие используется для обеззараживания кипячением, горячим паром, сухим жаром, обжиганием огнем. Высокая температура в виде сухого или влажного жара – сильное средство обеззараживания. Под их действием свертывается белок микробной клетки. Сухой жар широко применяется для обеззараживания лабораторной посуды, инструментов в сушильных шкафах. Кипящая вода тоже вызывает гибель микроорганизмов. Большинство вегетативных форм бактерий и вирусов при кипячении погибают в течение 15-30 минут. Споровые при кипячении погибают в течение 45-120 минут. Метод кипячения применяют для обеззараживания спецодежды, инструментов, посуды. Водяной пар – одно из основных надежных дезинфицирующих средств. Используется под давлением в автоклаве. При давлении 1,5-2 атм. и температуре 115-120 ºС достигается полное уничтожение микробов, вирусов, грибов. Огонь как дезинфицирующее средство используется для сжигания зараженных микробами подстилки, навоза, остатков корма, трупов животных. Обжиганием можно обеззараживать лабораторное оборудование и столы для вскрытия. Гамма-лучи вызывают быструю гибель микроорганизмов. Используются для дезинфекции шерсти и кожевенного сырья. Ультразвук способен механически разрушать микроорганизмы. Используют для стерилизации жидких сред и сохранения антигенных свойств микробов.
Биологический метод
Микробы-антагонисты, термофильные микробы. Применяется для обеззараживания навоза, сточных вод на полях орошения и фильтрации, мусора, отбросов, трупов в биотермических ямах.
Контроль качества дезинфекции
Через 2-3 часа после проведенной дезинфекции берут пробы и отправляют в лабораторию. В лаборатории учитывают наличие санитарно-показательных микроорганизмов: кишечной палочки и стафилококков. Дезинфекция признается удовлетворительной, если нет роста тест-микробов при профилактической и заключительной дезинфекции во всех пробах. При текущей вынужденной допускается рост в 10% проб.
Дезинсекция и методы дезинсекции
Комплекс мероприятий, направленных на борьбу с насекомыми и клещами, которые причиняют вред животным и служат переносчиками возбудителей заразных болезней. Среди огромного разнообразия насекомых в природе большое влияние на ветеринарно-санитарное состояние животноводческих объектов оказывают синантропные насекомые, т.е. насекомые, которые обитают рядом с человеком и в той или иной степенью связаны с его жизнью. Из них первостепенное значение придается различного вида мухам, комарам, мошкам и другим насекомым, нападающим на животных и на человека в помещениях и на пастбищах. Большое количество мух в помещениях – показатель антисанитарного состояния хозяйства и всей прилегающей к нему территории.
Мухи, обитающие на фермах, делятся на копрофагов, гематофагов, полифагов. Для выплода они откладывают яйца в навоз, падаль, испорченное мясо, мусор, помойные ямы. Мухи на поверхности своего тела носят огромное количество микроорганизмов. На отдельных особях при исследованиях было обнаружено до 6 млн., а в кишечнике до 28 млн. бактерий. Мухи распространяют возбудителей многих инфекционных заболеваний: сибирской язвы, бруцеллеза, ящура, туберкулеза, сальмонеллеза, колибактериоза и т.д. В животноводческих помещениях преобладают комнатная муха и осенняя жигалка, а на территории ферм и около помещений синие и зеленые мясные мухи.
Обычно мухи появляются в помещениях и на пастбищах в апреле-мае, достигают по численности максимума с июля по сентябрь, перезимовывают в фазе имаго, личинки, куколки. В отапливаемых помещениях развиваются круглый год. Продолжительность жизни 33-60 дней. За этот период муха способна дать 4-6 кладок с количеством яиц от 50 до 180 в каждой кладке. Мухи беспокоят животных, вследствие этого у животных снижается продуктивность, мясная и молочная, с ними нужно бороться всеми методами, которые существуют на сегодняшний день.
Борьбу с мухами ведут профилактическими и истребительными мерами.
Профилактические меры борьбы с мухами направлены на создание условий, препятствующих размножению мух, т.е. для этого ликвидируют места откладки яиц, не допускают залета мух в помещения, поддерживают постоянную чистоту в помещениях и на территориях, регулярно меняют подстилку, навоз, трупы.
Истребительные меры – уничтожение насекомых и клещей во всех фазах их развития. Для этого используют механические, физические, химические, биологические методы.
Механические методы
Механическая очистка фермы и её территории от навоза, мусора. Применение механических препятствий в виде сеток на окнах, дверях. Применение различных ограждений и ловушек для насекомых. Покрытие навозохранилищ листами картона, плотной бумагой, толем, соломой, что препятствует яйцекладке мух.
Физические методы
Высокая температура, высушивание, электричество.
Высокая температура используется в виде горячего пара или кипящей воды, также применяют огонь паяльной лампы или специальные огнево-паровые аппараты.
Электричество применяется мало, в связи с быстрыми темпами электрификации сельского хозяйства имеются несомненные перспективы его широкого использования. Можно сделать электросветовые ловушки, электрические заградители, приманочные электрические ловушки для мух, вентиляторы.
Высушивание имеет некоторое значение для борьбы с мухами на фермах. Для предотвращения яйцекладки и развития личинок мух корма должны быть сухими, постоянно должна быть в сухом виде посуда и тара для молока.
Биологический метод
Основан для использовании естественных врагов насекомых. Для борьбы с насекомыми применяют энтомопатогенные бактерии, вирусы, грибы. Привлекают птиц и насекомых некоторых видов. Например, осы и стрекозы являются пожирателями слепней, куры поедают личинок мух. Перспективно искусственное выведение бесплодных самцов, препараты на основе bacillus thuringegsis. В США проводят стерилизацию самцов насекомых гамма-лучами. Широко применяют химическую стерилизацию (афолат, афоксид).
Химический метод
Основной и наиболее распространенный. Применяют химические препараты – инсектициды. Они подразделяются на 4 группы.
1 группа – контактные. Проникают в организм насекомых через наружные покровы. Препараты контактного действия выпускают в виде хорошо адсорбирующихся растворов и аэрозолей. Например, хлорофос, 3-хлорметафос.
2 группа – препараты кишечного действия. Проникают в организм с пищей и с водой. Например, арсенид кальция и натрия, борная кислота, бура. Применяются для уничтожения насекомых с ротовым аппаратом грызуще-лижущего типа (тараканов, муравьев).
3 группа – фумигантные препараты. Действуют через органы дыхания, например, дихлофос, гексахлорбутадиен.
4 группа – репелленты. Оказывают отпугивающее действие. Например, диметилфтолат, диэтилтолуамид, гексамид и т.д.
Инсектициды используют в виде растворов, аэрозолей, порошков, дустов. Обработку проводят из ветеринарных дезинфекционных машин (ДУГ, ЛСД, аэрозольные генераторы, гидропульты, дустораспылители).

Дезинфекция сырья животного происхождения
Шкуры, рога, копыта, кости, кишечное сырье, у птиц пух, перо, у свиней щетина, волос.Закупку сырья животного происхождения производят местные заготовительные организации и отдельные заготовители. Закупают сырье в хозяйствах и в частном секторе. Сырье поступает на различные перерабатывающие предприятия.
Может быть закуплено сырье от инфекционно больных животных, поэтому ветеринарная служба берет на учет все заготовительные пункты. Ветеринарные специалисты проводят инструктаж с работниками заготовительных организаций и отдельным заготовителями с указанием населенных пунктов, в которых можно проводить закупку сырья, и пунктов, в которых её проводить нельзя. Отдельным заготовителям выдаются маршрутные листы проезда для заготовки сырья в населенных пунктах. Ветеринарная служба организует и контролирует дезинфекцию мест хранения сырья при заготовительных организациях, дезинфекцию транспорта, проводит периодический осмотр складских помещений.
Кожевенное сырье (сибирская язва)
Все кожевенное сырье, заготовленное в индивидуальном секторе, считается «сборным» и на складах складывается отдельно. Оно обязательно подвергается исследованию на сибирскую язву. Все шкуры при закупке нумеруются и складываются в штабеля, которые тоже нумеруются. Для исследования на сибирскую язву ветеринарные специалисты из каждой шкуры вырезают пробы 10х10см и каждую пробу нанизывают на проволоку. На каждую пробу – номер шкуры, на проволоку – деревянная этикетка с номером штабеля. Составляют сопроводительный документ, отправляют вместе с пробами в лабораторию. В сопроводительном документе обязательно указывают номер тюка или штабеля, метод консервирования, вид сырья, номер серии, номера и количество проб, вид упаковки (мешок, коробка, стеклянная тара).
В лаборатории пробы в первую очередь подвергают автоклавированию при температуре 120 ºС в течение 20 минут. Затем измельчают, проводят экстрагирование (получают прозрачный экстракт), ставят РП. После исследования лаборатория дает ответ, где указывает вид сырья, номер тюка или штабеля, консервирование, номер серии, номера и количество проб, результат исследования по каждой пробе (+ или -). Также все фиксируется в специальном журнале, в котором отмечают дату исследования, номер экспертизы, вид шкур, консервирование, количество шкур, давших положительную реакцию.
Шкуры, которые дают положительную реакцию, сжигают; составляют акт на уничтожение. Все остальные шкуры из неблагополучного штабеля подвергают дезинфекции; составляют акт на дезинфекцию.
45516807521575Также на сибирскую язву проверяют все шкуры, поступающие из-за границы, из санитарных боен мясокомбината.
Дезинфекция вторсырья (шерсть, волос, щетина, пух, перо, рога, кости)
Дезинфекция шерсти
Автоклавирование, (110-112 ºС 105 минут);
Пароформалиновые камеры (62-65 ºС, 90 минут);
Вымачивание в растворе формальдегида (2,5%, 6ч).
Дезинфекция волоса и щетины
Автоклавирование (110-112 ºС, неспоровые 30 минут, споровые – 60).
Дезинфекция пуха и пера
Текучим паром при 100 ºС в течение 45 минут;
Замачивание в растворе, состоящем из 1% формальдегида и 0,2% кальцинированной соды, 15 часов, 20 ºС.
Кости, рога, копыта
Вымачивание в дез. растворах (2% раствор уксусной кислоты, раствор хлорной извести (не менее 5% активного хлора), формальдегид) в течение 6 часов при температуре 15 ºС.
Дезинфекция кожевенного сырья
В зависимости от возбудителя, которым инфицировано сырье животного происхождения, проводят дезинфекцию различными дез. средствами и в разных режимах. Для проведения дезинфекции при заготовительных организациях строят специальные помещения. Эти помещения зимой обязательно отапливаются. 2 отделения: загрузочное и разгрузочное. В загрузочное поступает инфицированное сырье, там есть весы. Между ними – чан с двумя крышками. В разгрузочном – две емкости, первая для дез. раствора, вторая для нейтрализующего раствора. Также должны быть весы для взвешивания дез. средств, умывальник, стеллажи для разделанного сырья, приспособления для развешивания продезинфицированного сырья.
Этапы дезинфекции кожевенного сырья
Определяют вес сырья и необходимое количество дез. раствора
Сырье: консервированное, неконсервированное. Неконсервированные шкуры: парные. Консервированные: мороженные, мокросоленые, сухосоленые (тяжелые, легкие), пресносухие.
Шкуры разного способа консервирования содержат разное количество воды, что учитывается при приготовлении дез. раствора. Наименьшее количество воды содержится в пресносухих шкурах. Поэтому все сырье взвешивают и переводят на вес пресносухого сырья, пользуются переводными коэффициентами (т.2 Ветеринарного законодательства). Х = вес сырья / переводной коэффициент.
Для КРС:
Парная- 2,5
Мороженные – 2,175
Мокросоленые – 2,875
Сухосоленые тяжелые – 1,375
Сухосоленые легкие – 1,325
Дез. раствор готовят в соотношении 1:10, т.е. на 1 кг сырья – 10 литров дез. средства. Оно готовится в разгрузочном отделении. Затем его переливают в чан для дезинфекции.
Подогревание дез. раствора в чане
Чан с раствором подогревается змеевиком до 40-43 ºС.
Загрузка чана кожевенным сырьем
Загружают чан шкурами в расправленном виде, их расправляют, кладут мездрой вниз. Сверху придавливают деревянной решеткой, чтобы они не всплывали, чан закрывают. Если чаны не крутятся, то во время дезинфекции их нужно время от времени перемешивать.
Экспозиция
В зависимости от вида возбудителя.
Разгрузка чана
Со стороны разгрузочного отделения. Открывают крышку, вынимают шкуры, развешивают над чаном.
Нейтрализация
В отдельной емкости готовится нейтрализующий раствор (если была кислота в дез. растворе, то готовят раствор со щелочью). Помещают шкуры в емкость с нейтрализующей жидкостью, выдерживают определенное время, используют индикаторы.
Шкуры снова развешивают
Консервирование
Обильно посыпают солью, кладут на стеллажи. Если продезинфицированные шкуры используются, то их отмывают водой от соли и отправляют на перерабатывающее предприятие.
Дезинфекция кожевенного сырья при сибирской язве и при других споровых инфекциях
Два метода
Состав раствора (100л) Режим Нейтрализатор
Соль HCl H2SO4 Натрий кремнефтористый Жидкостный коэффициент t0 Экспозиция, чСоль Углекислый натрий Экспозиция, чI 10 кг 2,5% - - 1:10 30 40 6 0,5% 2
II 10 кг - 0,7% 1% 1:10 35 48 6 0,5% 2
1 метод – пикелевание, дез. раствор – «пикель». Во время дезинфекции измеряют концентрацию соляной кислоты 3 раза – до загрузки сырья, через 20 часов, после дезинфекции. При нейтрализации индикатор – метилрот. Когда нейтрализация заканчивается, цвет меняется на ярко-желтый.
2 метод – не пикелевание
Дезинфекция шкур, полученных от пушных зверей
Меховое сырье. Тоже подвергается пикелеванию, но с предварительной отмочкой в кислом хлебном киселе. В состав входит вода, овсяная мука, соль. На 1 кг сырья 12 литров киселя. Приготовленная смесь киснет в течение суток при температуре 30-35 ºС. Затем в него опускают меховое сырье и выдерживают 3 суток. После истечения этого времени достают, готовят пикель, опускают в него отмоченное меховое сырье.
Готовые меховые изделия (шапки, воротники), если есть подозрение, что шкуры не проверены, пропускают через пароформалиновую камеру (пар + пары формальдегида), температура 58-59 ºС, 85-215 минут (в зависимости от объема).
Дезинфекция кожевенного сырья при вирусных и неспоровых заболеваниях
Дезинфекцию кожевенного сырья при вирусных и неспоровых инфекциях проводят 2 методами.
Посолом
Готовят солевую смесь (на каждые 100 частей пов. соли берут 7 частей кремнефтористого натрия). Отдельно готовят насыщенный раствор кремнефтористого натрия (10 г растворяют в 1 литре горячей воды). Для дезинфекции выбирают комнату с водонепроницаемым полом. Участок пола орошают из поливальника насыщенным раствором кремнефтористого натрия. Наносят солевую смесь, кладут шкуру мездрой вверх. Орошают (обильно) насыщенным раствором кремнефтористого натрия, наносят толстый слой солевой смеси. Кладут вторую шкуру мездрой вверх. Орошают, солевая смесь, третья шкура…. Получается штабель из шкур, высота произвольная. Его со всех сторон обильно орошают насыщенным раствором кремнефтористого натрия, и дезинфекция идет в течение 10-12 дней при температуре не ниже 10 ºС.
В тузлуке
Готовят тузлук. Это смесь, состоящая из насыщенного раствора поваренной соли и какого-либо дез. средства, в зависимости от вида возбудителя. Берут бочку, на дне делают мелкие отверстия дрелью, на дно бочки кладут фильтры. Бочку полностью заполняют чистой поваренной солью. Медленно, каплями добавляют воду, чем медленнее – тем концентрированнее раствор. В полученный раствор добавляют дез. средство. Можно добавить уксусную кислоту, можно каустическую соду. Выдерживают определенное время (24 ч., 6 ч., 12 ч., 20 часов), в зависимости от дез. средства.
Методы дезинфекции шкур, полученных от бродячих собак
Высушивание при температуре 30 ºС в течение 6 суток;
Вымачивание в течение 12 часов при температуре 18-20 ºС в растворе, состоящем из 1,5% алюминиевых квасцов и 10% поваренной соли, потом консервируют или просто сушат.

Химический метод дезинфекции. Требования к дезинфектантам, этапы дезинфекции. Ветеринарно-санитарная техника.
Химический метод дезинфекции
Применяют различные химические средства в виде водных растворов, твердых или сыпучих веществ, газа или аэрозоля. Химические вещества наиболее доступны и широко применяются в практике для дезинфекции животноводческих помещений, почвы, оборудования. Водные растворы химических веществ чаще применяют в виде орошения с помощью специальных машин (ДУК, ЛСД, ВДМ). Один из путей совершенствования химического метода дезинфекции – применение аэрозолей. Температура внутри помещения должна быть не ниже 15 ºС, относительная влажность – в пределах 60-95%. Аэрозоль получают с помощью различных установок и специальных генераторов-распылителей (ТАН, ПВАН).
При выборе химических средств для дезинфекции нужно учитывать:
Средство должно обладать достаточной бактерицидностью;
Широким средством действия;
Не должно иметь стойкого неприятного запаха;
Не должно портить предметы;
Должно быть дешевым;
Не должно накапливаться в организме животных.
Препаратов очень много. Широко используют для химической дезинфекции щелочи. Щелочи – хорошо растворимые в воде основания, создающие в водном растворе большую концентрацию гидроксильных ионов. Под действием щелочи происходит гидролиз белков, омыление жиров, расщепление углеводов микробной клетки.
Гидроокись натрия (каустическая сода) – самый распространенный препарат для дезинфекции. Применяют 2-3% горячие растворы (70 ºС) при большинстве бактериальных и вирусных инфекций. Гидроокись калия – аналогично. Намного дороже, поэтому применяется реже. Гашеная известь. Получают путем обжига известняка. Первоначально получаемая негашеная известь не бактерицидная. Бактерицидность она приобретает только после гашения водой. Применяют 10-20% взвесь свежегашеной извести. Готовят взвесь на воде => известковое молоко. Используют для побелки стен, потолков, столов, деревянных полов, коры, кормушек. Применяется также в виде пушонки (порошка) для посыпки кормовых проходов. Кальцинированная сода (натрий углекислый, карбонат натрия). Применяют для отмывания жирных поверхностей перед дезинфекцией. Также применяют для кипячения белья (1-2% раствор) или для кипячения металлических инструментов. Зола. Из золы готовят щелок. Зола заливается водой, настаивается несколько дней, фильтруется. Применяют для обмывания животных при кожных болезнях. Поташ (карбонат калия) добывают из золы растений. Обладает щелочными свойствами, применяется как моющее средство. Каспос (каустифицированная содо-поташная смесь) – жидкость желтоватого цвета без запаха, содержащая 40-42% едких щелочей. Хорошо растворима в воде, не ядовита, применяется для дезинфекции животноводческих помещений и инвентаря в виде водных растворов. Демп (дезинфицирующий моющий препарат). Белый сыпучий порошок без запаха, хорошо растворяется в воде. Применяют 4% растворы демпа для мойки и профилактической дезинфекции помещений молочной и мясной промышленности.
Кислоты. Применяются реже, чем щелочи. Чаще всего применяют соляную кислоту для дезинфекции питьевой воды, кишечных выделений, мочи и сточных вод. Широко применяется соляная кислота при дезинфекции сибиреязвенного сырья для приготовления пикеля и однохлористого йода. Серную кислоту в чистом виде применяют редко, используют для приготовления серно-карболовой смеси. Из органических кислот широко применяют молочную кислоту – для аэрозольной дезинфекции в присутствии животных и птиц. Муравьиная кислота в смеси с перекисью водорода применяется для аэрозольной дезинфекции помещений и для обработки кожного покрова животных. Уксусную, щавелевую кислоты используют для обеззараживания кожевенного сырья при ящуре, а также в виде аэрозолей.
Хлорсодержащие препараты. Хлор, хлорная известь, гипохлориты. Являются сильными окислителями, их используют для обеззараживания питьевых и сточных вод, для дезинфекции вагонов и помещений для животных. Хлорная известь получается путем пропускания газообразного хлора через сухую гашеную известь. Качество хлорной извести оценивается по количеству в ней активного хлора: в технической 30-38%, в продажной не менее 25%. Хлорная известь с содержанием активного хлора менее 15% непригодна для дезинфекции. Для дезинфекции используют хлорную известь в виде порошка, раствора, взвеси. Порошок хлорной извести является не бактерицидным, но в присутствии воды дезинфицирующие свойства порошка быстро возрастают. Поэтому порошок хлорной извести применяют там, где есть влага. При соединении порошка хлорной извести с водой происходит бурная химическая реакция, при этом высвобождается хлор, температура достигает 70 ºС, медленно снижается. Растворы готовят из сухой хлорной извести, содержащей не менее 20% активного хлора. Хлорную известь используют для дезинфекции при заболеваниях, вызываемых спорообразующими возбудителями и вирусами. Гипохлорит кальция – желтоватый порошок с запахом хлора. Получается путем пропускания хлора через взвесь гашеной извести. Содержит 80-90% активного хлора. Растворы гипохлорита кальция обладают сильными окислительными свойствами. Растворы применяют для дезинфекции сточных и питьевых вод, дезинфекции помещений. Гипохлор – жидкость со слабым запахом хлора. Получают путем насыщения газообразным хлором водных растворов каустической или кальцинированной соды или препарата каспос. Препарат обладает широким спектром действия, отбеливающими и дезинфицирующими свойствами. Хлорамин Б – белый порошок, который содержит 25-29% активного хлора. Обычно применяют 1% раствор хлорамина Б для дезинфекции помещений, одежды и обуви. Однохлористый йод (препарат 74-Б). В состав однохлористого йода входит йодноватистый калий, йодистый калий, концентрированная соляная кислота, вода. Применяют для дезинфекции животноводческих и птицеводческих помещений, для уничтожения плесени в холодильных камерах на мясокомбинатах, для обеззараживания кожного покрова животных при дерматомикозах и при сибирской язве. Дезмол. Для мойки и дезинфекции доильных аппаратов и молочной посуды. Представляет собой смесь неорганических соединений, моющих средств, хлорсодержащего компонента. Используют 0,25 – 0,5% растворы данного препарата.
Перманганат калия. Является сильным окислителем. 0,5-2% растворы применяют для дезинфекции рук. 2-4% растворы применяют для дезинфекции столов в мясных палатах и для дезинфекции тары из-под кишечного сырья.
Фенолы. Применяются мало, так как обладают сильным запахом.
Чаще всего применяют карболовую кислоту. Она применяется для дезинфекции открытых поверхностей, 3-5% растворы. Ксилонафт-5 – маслообразная жидкость темно-коричневого цвета, 2-5% водные эмульсии. Серно-карболовая смесь: 3 части карболовой части, 1 часть серной кислоты. 1 % раствор для дезинфекции помещений при дерматомикозе, скотного двора при сибирской язве. 2% для обеззараживания полов, сточных желобов, место погрузки и выгрузки животных. Мыльно-карболовая смесь: 5 частей зеленого мыла, 3 части серно-карболовой смеси. Для обеззараживания предметов, загрязненных жирными веществами и выделениями животных. Оксидифенолят натрия (Ф-5). Хорошо растворяется в воде, применяется в виде 2% раствора для обеззараживания холодильников от плесневых грибов. Феносмолин – смесь фенольной смолы, этанола и гидроокиси натрия. Применяют 3% водные эмульсии феносмолина для профилактической и вынужденной текущей дезинфекции при неспоровых инфекциях, 18% эмульсии – при споровых инфекциях.
Формалин. 30-40% водный раствор формальдегида. Прозрачная жидкость с едким запахом. Ядовит. Для дезинфекции готовят раствор с определенным количеством формальдегида. Он вызывает денатурацию белка, губительно действует на споровые формы микробов, на неспорообразующие микроорганизмы, вирусы и грибы. Его можно применять в водных растворах, в газообразном состоянии, в виде аэрозолей в чистом виде или в смесях. Для дезинфекции любых объектов животноводства, шерсти, спецодежды, веревок, меховых изделий. Для получения паров формальдегида берут металлический сосуд, наливают туда формалин, к нему приливают воду в 50% размере, затем добавляют столько же перманганата калия. Начинается бурная реакция, при этом выделяется большое количество тепла, образуется муравьиная кислота, закипает и испаряется в смеси с некоторым количеством непрореагировавшего формалина.
ОКЭБМ состоит из одной части окиси этилена и 2,5 частей бромистого метила. Однородная прозрачная жидкость с резким эфирным запахом. При соприкосновении с огнем легко воспламеняется и горит сильно коптящим пламенем. В условиях обычного атмосферного давления кипит при температуре 8,5 ºС, переходя в газообразное состояние. Сильный яд, работают в противогазах. Обладает высокой дезинфицирующей активностью. Для обеззараживания хирургических инструментов, шовного материала, сырья животного происхождения и др.
Препараты для дезинфекции помещений в присутствии животных и птиц.
Молочная кислота, хлорскипидар, гипохлорит натрия, тексонит, глутаровый альдегид, йод-3-этиленгликоль, метан.
Этапы дезинфекции
Механическая очистка;
Промывание теплой водой труднодоступных загрязнений;
Собственно дезинфекция растворами дезинфектантов. Пол, стены, оборудование, потолок, пол;
Экспозиция;
Определение качества дезинфекции.
Пробы берут через 2-3 часа. 20-30 проб стерильными ватными тампонами, смоченными в нейтрализующем растворе. Если щелочь – в пробирку наливают уксусную кислоту, формалин – нашатырный спирт, окислители (хлорная известь) – гипосульфит натрия, щелочной раствор формалина – смесь нашатырного спирта и уксусной кислоты. Составляют акт, где указывают: адрес лаборатории, вид дезинфектанта, какое заболевание, дата дезинфекции, время взятия проб, нейтрализующий раствор. Концентрация нейтрализующего препарата должна быть в 10 раз меньше дезинфицирующего. В лаборатории делают посев на питательные среды на наличие санитарно-показательных микроорганизмов (кишечные палочки, стафилококки). Смывы: вату отжимают и уничтожают, центрифугируют жидкость, жидкую часть удаляют, осадок используют на посев. Кишечная палочка: среда ***фиса, культивирование 12-18 часов при 43 ºС. Цвет среды меняется на зеленый, если есть кишечная палочка – помутнение среды и газообразование. Стафилококк: 0,5 мл осадка в 5 мл 5% раствора сахарного МПБ. Инкубация при 37 ºС 24 часа, стафилококки дают бурое помутнение. Через 24 часа проводят пересев на среду Петровича, инкубация 24 часа. На этой среде стафилококки образуют пигмент, если патогенные – золотистые колонии, если условно патогенные – коричневые, если сапрофитные – белые. Лаборатория дает заключение: дезинфекция удовлетворительная, если нет роста микробов в исследуемых пробах, при профилактической – в 100%, текущей – 90%, заключительной – 100%.
6.Промывание, проветривание помещений. Двери, окна открыть, все поилки, кормушки освободить от дезраствора, промыть водой;
7.Составление акта на проведение дезинфекции, остается у врача.
Ветеринарно-санитарная техника
Требования, предъявляемые к ветеринарно-санитарной технике: высокая производительность; экономичность; высококачественная обработка объектов. По характеру выполняемых работ ветеринарно-санитарную технику делят на группы: специализированные дезинфекционные машины и аппараты; аппараты для дезинфекции аэрозолями; аппараты для орошения кожного покрова животных; дезинфекционные камеры.
Специализированные дезинфекционные машины и аппараты
ЛСД - лаборатория санитарии и дезинфекции;
ВДМ – ветеринарная дезинфекционная машина;
АДА – автомобильный дезинфекционный агрегат;
ДУК – дезинфекционная установка Комарова;
УДС – установка дезинфекционная самоходная;
УДП-м – установка дезинфекционная передвижная малогабаритная.
Проводится:
Дезинфекция и дезинсекция помещений горячими и холодными растворами, суспензиями, взвесями и аэрозолями дезинфицирующих средств;
Побелка помещений свежегашеной известью и санитарную промывку их водой;
Обмывание и опрыскивание животных инсектицидами;
Аэрозольная обработка животных инсектицидами и репеллентами;
Детоксикация животных при поражении отравляющими веществами;
Опрыскивание садов от вредителей;
Санитарная промывка асфальтированных дорог и площадок;
Орошение газонов и почвы на территории и вокруг ферм.
Ручной портативный гидропульт «Костыль»
Аппараты для дезинфекции и дезинсекции аэрозолями
САГ – струйный аэрозольный генератор;
ДАГ – дисковый аэрозольный генератор;
ПВАН – пневматическая вихревая аэрозольная насадка;
ТАН – турбулирующая аэрозольная насадка;
АГ – аэрозольный генератор (АГ-Л6);
Аппараты для орошения кожного покрова животных
С целью защиты животных от нападения кровососущих насекомых, клещей в пастбищный период.
ШРР - штанга разборная распылительная;
ОСА – опрыскиватель сборный автоматический. ОСА-1.
Дезинфекционные камеры
Используются для дезинфекции предметов ухода за животными, спецодежды обслуживающего персонала, шерсти, пуха, пера, щетины, волоса и другого сырья животного происхождения физическими, химическими или одновременно теми и другими средствами.
Паровые - работают на пару, физический метод. Полы решетчатые. Парообразователь располагается снизу, наливают воду, нагревают, вода испаряется. Температура в пределах 100 ºС. Пароформалиновые - на обеззараживаемый предмет действуют высокая температура и пары формальдегида. Кроме воды наливают формалин, испаряется формальдегид, который хорошо уничтожает споры. Стационарные и передвижные. Стационарные устанавливаются на постоянном фундаменте в специальных помещениях. Передвижные – на каком-либо виде транспорта.
Дезинфекция: воздух нагревается (прогревают камеру), загружают предметы, подвергают предварительному подсушиванию. Температуру поднимают до заданного значения, выдерживают определенную экспозицию. Отключают, открывают двери с разгрузочного отделения, проветривают, охлаждают. Пары формальдегида нейтрализуют нашатырным спиртом. Выгружают камеру. ОППК-1 – огневая паровоздушная пароформалиновая камера (стационарная). ОППК-2 - -//- (передвижная)

Классификация инфекционных болезней
Венгерские ученые Гутера, Марек в своем руководстве «Патология и терапия домашних животных» предприняли попытку классифицировать инфекционные болезни по принципу остроты течения. В неё не укладываются острые кормовые и травматические токсикоинфекции и микотоксикозы, отсутствует единый классификационный принцип.
Другие классификации: в основе лежат этиологический фактор, распространенность, среда обитания возбудителя и др.
По распространенности: широко распространенные; регистрируемые, но достаточно редко встречающиеся; экзотические.
По половозрастным признакам: болезни взрослых животных; молодняка; новорожденных.
По экологическим признакам: зоонозы; антропонозы; зооантропонозы; антропозоонозы; ктенонозы (домашние животные); терионозы (дикие животные); ктенотерионозы (домашние и дикие + синантропные грызуны).
Классификация МЭБ (международного эпизоотического бюро):
В основу положен принцип опасности болезней с точки зрения их возможного распространения из неблагополучных стран в благополучные.
Список A. Особо опасные. О появлении инфекционных заболеваний из списка A МЭБ информируют немедленно. 15 заболеваний, 14 – вирусные, 1 микоплазмозное. Сап, сибирская язва, эмфизематозный карбункул, бруцеллез, туляремия, перипневмония крупного рогатого скота, чума крупного рогатого скота, чума свиней, псевдочума птиц, ящур, бешенство.Список Б. Болезни, не способные к быстрому эпизоотическому распространению. Информацию о них МЭБ представляют 1 раз в год. 91 заболевание.
Инфекционные болезни, общие для животных многих видов;
Болезни по видам (КРС, МРС, свиней, лошадей, верблюдов, оленей, ослов, пушных зверей, кроликов, собак и кошек, птиц, рыб, пчел);Указанный перечень разбит на 3 группы. Отчеты по нему представляют ежемесячно, ежеквартально и ежегодно. Данная классификация удобна для ветеринарной отчетности, но имеет недостатки.
Одни и те же болезни повторяются в разных разделах;
Некоторые группы болезней почти не представлены (риккетсиозы, микоплазмозы, микозы, микотоксикозы);
Список C
Остальные болезни, которые регистрируют в различных странах, но информировать о них МЭБ необязательно.
Классификация по клинико-патологическому принципу. Инфекционные болезни классифицированы по преимущественно поражаемым системам организма.
Эпизоотологическая классификация. В её основу положен принцип локализации возбудителя в организме и механизм его передачи. В ветеринарии данный принцип был использован Ганнушкиным в 1961 году, а впоследствии развит и усовершенствован Вакуловым. Ганнушкин разделил инфекционные болезни на 5 групп, в каждой из которых были выделены дополнительные подгруппы.
Алиментарные болезни;
Аэрогенные болезни;
Трансмиссивные болезни;
Контактные болезни;
Группа неклассифицированных болезней, при которых механизм передачи возбудителя не установлен.
В основе эпизоотологической классификации Вакулова лежат 3 принципа: механизм передачи, источник возбудителя инфекции и класс возбудителя инфекции.
Алиментарные болезни
Алиментарный путь передачи, факторы: инфицированные корма, вода, навоз, почва. Сибирская язва, эмкар, ботулизм, бруцеллез, брадзот, инфекционная энтеротоксемия, рожа свиней, паратуберкулез, классическая и африканская чума свиней. Возбудители данных заболеваний очень устойчивы во внешней среде. Восприимчивость к данным болезням высокая. Основные противоэпизоотические мероприятия: изоляция больных, ведение индивидуального кормления и водопоя, иммунизация, проведение дезинфекции.
Аэрогенные болезни
Возбудители передаются через дыхательные пути. Преобладают вирусные болезни. Возбудители данных болезней нестойки во внешней среде, трудно культивируются на искусственных питательных средах. Благоприятствуют распространению этих болезней скученность, плохая вентиляция помещений, высокая влажность, пониженная температура окружающего воздуха. Основные противоэпизоотические мероприятия: изоляция больных и микробоносителей, создание оптимального микроклимата, массовая обработка лечебно-профилактическими средствами, иммунизация животных.
Трансмиссивные болезни
Механизм передачи возбудителя сложен, осуществляется при помощи членистоногих. Это связано с ареалом переносчиков и природно-географическими условиями. Существенная особенность этих болезней – сезонность их проявления, связанная с активностью переносчиков в определенный период года. Общая профилактика трансмиссивных болезней и меры борьбы с ними сводятся к защите животных от нападения кровососущих членистоногих. Также сюда относится дезинсекция, обезвреживание источника возбудителя инфекции, проведение мероприятий в природном очаге, иммунизация животных.
Контактные болезни
Через наружные покровы, без участия переносчиков. Болезнь может передаваться при непосредственном соприкосновении (укусе, случке), а также через инфицированные предметы ухода, подстилку, почву. Профилактические мероприятия: изоляция больных животных, исключение травматизма, проведение дезинфекции.
Неклассифицированные болезни
Все меньше и меньше.

Эпизоотическое и ветеринарно-санитарное обследование хозяйств
Эпизоотологическое обследование
Один из методов эпизоотологии. Изучение ряда вопросов, важных для выяснения эпизоотической ситуации или обстановки в отдельно взятом хозяйстве, районе или области. Эпизоотическая ситуация – данные о распространении инфекционных болезней (одной или нескольких) на конкретной территории за определенный промежуток времени. Эпизоотологическое обследование входит в состав комплексных противоэпизоотических мероприятий. Его проводят:
В неблагополучном пункте при возникновении свежего эпизоотического очага;
В затухающем эпизоотическом очаге с целью определения полноты и эффективности проведенных противоэпизоотических мероприятий;
В благополучном хозяйстве с целью контроля полноты проводимых профилактических мероприятий, направленных на сохранение устойчивого эпизоотического благополучия;
Эпизоотологическое обследование проводится комиссионно. После него обязательно составляется акт эпизоотологического обследования, где обязательно указывается дата, адрес хозяйства, состав комиссии, цель обследования. В конце обязательно должно быть заключение. Все члены комиссии подписывают акт, и он заверяется печатью хозяйства.
3 этапа эпизоотологического обследования:
Характеристика эпизоотической обстановки (ситуации). На этом этапе выявляют источника возбудителя инфекции, механизм передачи возбудителя инфекции, пути заноса возбудителя и пути дальнейшего распространения болезни. Определяют также границы эпизоотического очага и границы угрожаемой зоны. Уточняют степень восприимчивости животных. Все это достигается детальным анализом природных и хозяйственных условий, а также проведением комплекса лабораторных, клинических и патоморфологических исследований;
Дальнейшее наблюдение за эпизоотическим очагом. На этом этапе выявляют эффективность проводимых противоэпизоотических мероприятий. Длительность наблюдения зависит от продолжительности инкубационного периода и от продолжительности самой болезни, от длительности микробоносительства, сроков сохранения возбудителя во внешней среде и в организме переносчиков;
Оценка полученных данных и разработка рекомендаций. На этом этапе проводят обобщение и обработку данных, вычисляют интенсивные показатели. К этим показателям относятся: заболеваемость, смертность, летальность.
Заболеваемость – отношение числа заболевших животных к среднегодовому поголовью восприимчивых животных. Заболеваемость выражают индексом заболеваемости. Показывает число заболевших животных на 100, 1000, 10000 животных. Смертность – отношение числа павших животных от данной болезни к числу восприимчивых животных в той или иной группе. Летальность (смертельность) – отношение числа павших животных к числу заболевших. Кроме этих трех показателей учитывают сезонность болезни. Сезонность – повышение заболеваемости животных и увеличение числа эпизоотических очагов в определенное время года. Сезонность = отношение числа заболевших животных в каждом месяце к общему количеству заболевших данной болезнью животных за год (в процентах).
При проведении эпизоотологического обследования пользуются вспомогательными методами: сравнительно-географическим, сравнительно-историческим. Эти два метода позволяют установить связь предыдущих эпизоотических вспышек инфекционной болезни с современной эпизоотической ситуацией. Также эти два метода позволяют выявить повторяемость эпизоотий в определенной местности (стационарность) и в определенные годы (периодичность). Также устанавливают зависимость эпизоотической обстановки от природно-географических и социально-экономических условий на определенных территориях.
Ознакомление с документами ветеринарного учета за 3-5 лет. К этим документам относятся:
Журнал для регистрации больных животных (форма №1);
Журнал для записи противоэпизоотических мероприятий (форма №2);
Журнал для записи эпизоотического состояния района (форма №3);
Журнал для учета дезинфекций, дезинсекций и дератизаций (форма №10);
Журнал патологоанатомического вскрытия. Изучаются результаты вскрытий, какой патологический материал отправлялся в лабораторию;
Изучение результатов лабораторных исследований;
Изучение эпизоотической карты хозяйства или района или области, на которой обозначаются все неблагополучные пункты (есть специальные значки для каждого вида животного и значки для инфекционных болезней);
Схема акта эпизоотологического обследования
Дата составления акта;
Состав комиссии эпизоотологического обследования;
Наименование обследуемого хозяйства, фермы, бригады;
Обоснование для обследования;
Характеристика хозяйства:
Размещение животных по бригадам, фермам, отделениям и порядок комплектования стада;
Количество животных интересующего вида по полу, возрасту на день обследования;
Условия содержания:
А) состояние помещений (сухие, влажные, холодные, утемпленные, вентилируемые, невентилируемые);
Б) плотность размещения животных с учетом возраста;
В) моцион животных
Условия кормления в летний и зимний период. Рационы по возрастным группам и их характеристика по качеству кормов и составу питательных веществ (К.Е., ПП, витаминам, минеральным веществам). При пастьбе животных дать характеристику пастбищ с указанием произрастания ядовитых трав;
Ветеринарно-санитарное состояние. Порядок уборки, обезвреживания и хранения навоза. Порядок уборки и утилизации трупов животных. Заселенность помещений мышевидными грызунами и птицами. Распространенность кровососущих насекомых и мух;
Анализ заболеваемости и смертности животных за последнее время;
Описание первых случаев заболевания по наблюдениям обслуживающего персонала, местного ветеринарного работника;
Какие диагностические исследования были проведены по уточнению предполагаемого заболевания и их результаты;
Эпизоотологические данные по заболеванию:
Заболеваемость, смертность, летальность;
Распространенность заболевания по помещениям и в отдельном помещении;
Продолжительность болезни до выздоровления или падежа;
Какие противоэпизоотические мероприятия были проведены (лечение, прививки, дезинфекция) и их результат;
Болеют ли другие виды животных и человек;
Установленный или предположительный источник инфекции;
Данные клинического обследования и патологоанатомического вскрытия;
Заключение (диагноз и факторы, способствовавшие развитию инфекции);
Предложения или календарный план противоэпизоотических мероприятий.
Ветеринарно-санитарное обследование
Проводится в благополучных по инфекционным заболеваниям хозяйствах с целью выявления нарушений в кормлении и содержании животных и для предупреждения возникновения инфекционных заболеваний. Например, с целью проверки готовности хозяйства к пастбищному сезону. Проводится комиссионно, в конце составляется акт. Схем акта ветеринарно-санитарного обследования та же, что и при эпизоотологическом обследовании, но выпускаются пункты с 6 по 10.

Профилактика и методы борьбы с грызунами. Механические и биологические методы
Мероприятия следует проводить постоянно и планово, раз в квартал. Комплекс мер борьбы с грызунами делится на профилактические и истребительские.
Профилактические мероприятия
Являются ведущими, направлены на лишение грызунов пищи, воды, а также лишение мест для устройства нор и гнезд. Слагаются из санитарных, строительно-технических, агротехнических мероприятий.
Санитарные мероприятия. Преследуют цель исключить доступ грызунов к пище, воде, норам. Все объекты животноводства нужно держать в чистоте, своевременно убирать остатки корма, удалять навоз и мусор, не допускать захламленности подвальных помещений и чердаков. Корма нужно хранить в местах или таре, недоступной для грызунов. Также не должно быть доступа к воде. Строительно-технические. Создание различных преград к проникновению грызунов в постройки. Во всех местах, куда могут проникать грызуны, ставят преграды в виде металлических сеток, плотно пригоняют двери, делают недоступными для грызунов фундаменты, устанавливают защитные козырьки. Агротехнические. Проведение весенней обработки зяби и паров, вспашка на установленную глубину. Своевременно убирают с полей солому, мякину, другие отходы.
Истребительные мероприятия
Механические методы
Различные системы ловушек и капканов. Ловушки устанавливают в местах, где имеются норы, или на пути следования грызунов. Успех применения ловушек зависит от соблюдения ряда правил. Ловушки не должны иметь подозрительного для грызунов запаха. Все ловушки и капканы после освобождения должны промываться в содовом растворе; должна быть правильно подобрана приманка, приманка должна быть свежей.
Биологический метод
Использование естественных врагов грызунов, искусственное заражение грызунов болезнетворными микробами, вызывающими среди них губительные эпизоотии. Птицы, совы, мелкие хищники, кошки, собаки.
Бактериальные культуры: методика начала разрабатываться в 19м столетии. Для данного метода используют культуры Мережковского, Данича, Исаченко, Прохорова. Все эти культуры относятся к сальмонеллезной группе. Сущность метода: при применении приманок с бактериальными культурами, создаются эпизоотии сальмонеллеза в популяциях мышевидных грызунов, приводящие к их полной ликвидации.
Комплексный метод диагностики инфекционных болезней
Эпизоотологический;
Клинический;
Патоморфологический (картина вскрытия, гистологическое исследование)4
Вирусологический (люминесцентная микроскопия, биопроба, выделение вируса, серологические реакции);
Бактериологический (выделение культуры, биопроба, микроскопия);
Иммунологический (аллергические пробы: внутрикожная, глазная, подкожная; серологическое исследование: РА, РСК, РДСК, РП, кольцевая проба с молоком и др.);Клинико-лабораторный (исследование морфологических и биохимических свойств крови, мочи, кала и др.).
При постановке диагноза на любое инфекционное заболевание всегда пользуются этим методом.
Эпизоотологический метод представляет собой систему изучения проявлений эпизоотического процесса. Устанавливают вид животного, возраст, пол, источник возбудителя инфекции, резервуар возбудителя, механизм передачи инфекции, ворота инфекции, интенсивность проявления эпизоотии, сезонность, периодичность, наличие предрасполагающих факторов, заболеваемость, смертность, летальность. Выясняют, проводилась ли вакцинация, какими вакцинами, в какие сроки, проводились ли диагностические исследования, встречались ли подобные заболевания ранее.
Требования к строительству биотермических ям и утильзаводов. Правила уничтожения трупов в биотермических ямах
Уничтожение в биотермических ямах (ямы Беккари).
Применяются для обезвреживания трупов, павших от неспоровой инфекции. Строительство биотермических ям проводится с разрешения санэпидстанции и ветеринарного управления. При строительстве есть требования:
Биотермические ямы строятся на специально отведенных площадках, желательно в лесу. Место должно быть сухим, возвышенным, с низким стоянием грунтовых вод (2,5-3 м);
Яму роют глубиной 10 м, диаметром 3 м. над ямой обязательно строят сарай или навес. Вокруг ямы должен быть забор высотой до 2 м;
Стены ямы выкладывают кирпичом или цементируют, раньше – из бревен. Стены выводят выше уровня земли на 40-70 см. делают две крышки, обе закрываются на замок. Делают вытяжной канал, который выводят выше крыши навеса для вентиляции ямы.
На территории биотермической ямы запрещается выпасать животных и косить траву.
Трупы разлагаются под действием развивающихся термофильных бактерий, температура поднимается до 65-70 ºС. Обеззараживание трупов достигается в течение 2-3 мес. Яму загружают до уровня 1,5 м ниже поверхности земли. Для полного разложения трупов и уничтожения патогенных микроорганизмов яму закрывают на 4-5 мес. Все действующие ямы состоят на учете, на них заводятся ветеринарно-санитарные карточки.

Правила обращения с заразно больными животными, принципы изоляции. Меры личной профилактики при общении с заразно больными животными
Существует целый ряд инфекционных болезней, общих для животных и человека: бешенство (вирусное), сибирская язва, туберкулез, бруцеллез, лептоспироз, листериоз, сальмонеллез (бактериальные), трихофития, микроспория (грибковые).Заражаются люди, которые имеют тесный контакт с животными: ветеринарные специалисты, обслуживающий персонал, работники перерабатывающих предприятий, люди, употребляющие в пищу продукты животного происхождения: сырое молоко, яйца, недоготовленное мясо. Ветеринарные специалисты заражаются при клиническом осмотре, взятии крови, вакцинациях, диагностических исследованиях, вскрытии трупов и при взятии патологического материала, проведении лабораторных исследований. Ежегодно прививаются против основных зооантропонозов. Правила личной безопасности:
При работе с заразно больными животными использовать средства личной профилактики: халаты, резиновый фартук, резиновую обувь, резиновые перчатки, нарукавники, колпак или косынку, защитные очки, марлевые или ватно-марлевые повязки, респираторы, противогазы (при особо опасных заболеваниях – чуме, ящуре и др.);После клинического осмотра и оказания лечебной помощи спецодежда снимается и подвергается дезинфекции; хранится в индивидуальных шкафах. Руки обязательно дезинфицируют (опускают в дезраствор), моют с мылом, обрабатывают спиртом;
При обслуживании заразно больных животных ни в коем случае нельзя курить и принимать пищу;
При работе в эпизоотических очагах (территория, где непосредственно содержатся больные животные) ветеринарные специалисты обязательно должны быть привиты против данной болезни;
Если человека укусили животное, подозрительное на бешенство:
Если рана глубокая, и вытекает кровь – нужно первое время не останавливать, чтобы кровь вытекала, а вместе с ней и вирус. Промыть рану мыльным раствором. Обработать рану спиртом или спиртовым раствором йода. Наложить повязку и обратиться в медицинское учреждение.
К обслуживанию заразно больных животных нельзя допускать:
Не проинструктированных людей;
Людей, не достигших 16 лет;
Людей, имеющих различные повреждения на коже;
Беременных женщин;
Пьяных людей;
Не привитых людей.
Изоляция больных животных и устройство изоляторов.
Отделение больных или подозрительных по заболеванию животных с целью изъятия их как источников возбудителя инфекции. Суть изоляции сводится к разрыву эпизоотической цепи. Для возникновения любого инфекционного заболевания необходимо наличие 3х звеньев эпизоотической цепи. Изолируют 1 звено эпизоотической цепи, и заболевание ре распространяется. Изолятор – отдельно стоящее специально оборудованное помещение для изоляции больных и подозрительных по заболеванию животных. В изоляторе животное находится до уточнения диагноза, если диагноз подтверждается – то до выздоровления.
Требования, предъявляемые к изоляторам:
Соблюдение санитарных зон: от животноводческих и звероводческих помещений – не менее 200 м, от птицеводческих помещений – 500 м, от автомобильных и железных дорог – на расстоянии 300 м, от областных дорог – 150 м, от населенных пунктов – 500 м.
Вокруг изолятора должен быть сплошной забор, высотой 2 м.
У входа в изолятор обязательно должен быть дезинфицирующий коврик.
Изолятор может быть построен недалеко от ветеринарных объектов, при наличии отдельного входа и выхода во двор изолятора и при наличии автономной системы канализации и вентиляции.
Высота помещения изолятора: для лошадей 2,7 м, для других видов животных 2,4 м. Стены, перегородки, потолки в изоляторе должны быть гладкими и окрашенными в светлые тона, краска должна быть устойчива к влаге и дез. средствам, так как дезинфекция проводится ежедневно. Полы должны быть бетонированными.
Вместимость изолятора зависит от поголовья животных в хозяйстве. Для коров при беспривязном содержании – 3%, при привязном содержании и для лошадей – 2%. Для молодняка КРС 2-3%. Для свиней 1-2%. Для овец 2,5-3%. Для пушных зверей, кроликов – 1%.
В изоляторе должен быть стационар, помещение для оказания лечебной помощи, помещение для хранения инвентаря, фуража, комната отдыха для обслуживающего персонала, санузел, аптечка в комнате отдыха, умывальник, полотенце, мыло, емкость с дез. раствором возле умывальника. В стационаре должно быть 80-90% скотомест, а 10-20% - отдельные боксы для содержания животных, больных особо опасными инфекционными заболеваниями.
Метлы и лопаты должны храниться в дезрастворе.
К обслуживанию больных животных допускаются только проинструктированные обученные люди со спецодеждой и спецобувью. Спецодежда и спецобувь должны подвергаться дезинфекции каждый день.
В изоляторе запрещается курить и принимать пищу.
Сточные воды должны собираться в водонепроницаемые резервуары, подвергаться дезинфекции, поле этого их можно спускать в общую канализацию. Обычно для дезинфекции добавляют хлорную известь. Навоз от больных животных собирается в специальные бетонированные ямы с плотными крышками и подвергается дезинфекции или вывозится в навозохранилища для биотермического обеззараживания.

Взятие и пересылка патматериала для разных методов исследования
При возникновении любого инфекционного или инвазионного заболевания или подозрении на отравление кормами ветеринарный врач должен отправлять патологический материал в лабораторию. Должен быть правильно составлен сопроводительный документ. Патологический материал берется для прижизненной и посмертной диагностики.
Условия для взятия патологического материала
В зависимости от предположительного диагноза.
С учетом максимальной локализации возбудителя в том или ином органе.
От животных с явно выраженными клиническими признаками.
От животных, не подвергавшихся лечению антибиотиками.
Должен быть свежим (берется в первые часы после смерти или вынужденного убоя животного.Патологический материал берется в спецодежде, -//- стерильными инструментами в стерильную посуду.
Каждая проба должна упаковываться отдельно в стерильную посуду.
При необходимости патологический материал подвергается консервированию, правильной упаковке и транспортировке.
Если есть подозрение на инфекционное заболевание, вызываемое бактериями, материал отправляют для бактериологического исследования. Если заболевание вирусного характера, то материал отправляют для вирусологического метода исследования. Также можно отправлять материал для гистологического исследования (например, при подозрении на бешенство). Кровь, сыворотка отправляются для серологического исследования. Если есть подозрение на отравление кормами, то корма отправляются для токсикологического или микологического исследования. При подозрении на инвазионную болезнь кал отправляют для копрологического исследования. Кровь могут отправлять для гематологического, биохимического исследования.
Взятие, консервирование и пересылка патологического материала для бактериологического и вирусологического методов исследования
При необходимости взятия небольшого кусочка из большого органа место разреза дезинфицируют либо горящим проспиртованным тампоном, либо прокаленным шпателем, в этом участка можно разрезать и взять небольшой кусочек органа.
Патологический материал разрешается отправлять не в консервированном, фиксированном виде или в консервированном. Не в консервированном виде отправляют трупы мелких животных целиком или органы крупных животных. Такой материал должен сопровождать нарочный. Завернуть в ткань, смоченную каким-либо дезраствором, в деревянный или металлический ящик и обкладывают опилками, стружкой, паклей и др., чтобы истечения впитывались. Ящик заливается дезраствором. Целые органы в полиэтиленовый пакет или как труп.
Если нет возможности доставить патологический материал в течение 24 часов после взятия, то его необходимо консервировать. Консерванты: для бактериологического метода: 30-40% водный раствор химически чистого глицерина; стерильное вазелиновое масло; насыщенный раствор поваренной соли (для консервирования кишечника, трубчатых костей). Трубчатые кости можно отправить, завернув в ткань, пропитанную 5% раствором карболовой кислоты. По объему консервирующая жидкость должна превышать объем патологического материала в 4-5 раз. Для вирусологического метода: холод (термосы: лед, снег+соль, смесь, состоящая из равных частей углекислоты и спирта); глицерин (30-50% раствор на стерильном физиологическом растворе); растворы антибиотиков.
Для прижизненной диагностики от больных животных отправляют: молоко (туберкулез, бруцеллез), кровь, мочу (лептоспироз), кал, мокроту (туберкулез), гной из абсцессов, экссудат, соскобы из прямой кишки (паратуберкулез), истечения из половых органов, носа, рта, глаз, соскобы с пораженных участков, пораженные волосы.Для посмертной диагностики патматериал выбирают в зависимости от места максимальной локализации возбудителя: головной мозг (бешенство, листериоз), паренхиматозные органы, кровь из сердца, отрезы кишечника, измененные лимфатические узлы, половые органы, трубчатые кости, кусочки кожи (сибирская язва), ухо (при сибирской язве).
Взятие патологического материала для серологического исследования
Обычно отправляют кровь или сыворотку, иногда молоко (бруцеллез). У крупных животных кровь берется из яремной вены в верхней трети шеи. У свиней кровь берут либо из уха, либо из кончика хвоста, у птиц – из гребешка или из подкрыльцовой вены.
Выстригают место взятия, обрабатывают спиртом или 3% раствором карболовой кислоты. Кровь при взятии должна бежать струей и по стенке пробирки, иначе происходит гемолиз, и сыворотка не подходит для исследования. На пробирке ставится номер животного или кличка, в частном секторе – фамилия владельца. Составляется сопроводительный документ и опись в 2 вариантах. От крупных животных 7-10мл, от мелких животных и птиц 2-3мл. Пробирки подписывают, ставят в теплое место на 1 час, чтобы кровь свернулась. Затем штативы с пробирками выставляют на холод на 10-12 часов, чтобы образовалась сыворотка. Затем сыворотку сливают в другую (чистую) пробирку или пенициллиновый флакончик. На крышке флакончика или на 2 пробирке пишут тот же номер. Можно использовать для этой цели одноразовые шприцы. Сыворотку необходимо отправить в лабораторию в течение суток, при массовых взятиях проб разрешается держать сыворотку при температуре 4 ºС в течение 3 дней. Если нет возможности – сыворотку необходимо консервировать 5% раствором карболовой кислоты на физиологическом растворе из расчета на каждые 9 мл сыворотки 1 мл раствора карболовой кислоты или 1-2 капли раствора на 1 мл сыворотки. Можно консервировать также борной кислотой, высушиванием. Для серологического исследования в лабораторию можно отправлять и цельную кровь, не отделяя сыворотку, но при условии, что в пути ее не будут встряхивать и она не подвергнется гемолизу.
Взятие материала для гистологического исследования
Для гистологического исследования материал берут от свежих трупов или убитых животных. Нужно брать те органы и ткани, где обнаружены те или иные патологические изменения. Из разных участков патологически измененных органов (тканей) вырезают тонкие, небольшие кусочки, не более 1- 2 см толщиной. Вместе с пораженными участками ткани захватывают и граничащую с ней нормальную ткань. Учитывают микроскопическое строение того или иного органа и ткани. После взятия материал тотчас помещают в фиксирующую жидкость, объем которой должен в 10 раз превышать объем взятого материала. В качестве фиксирующей жидкости лучше всего использовать 10% водный раствор продажного формалина. За неимением формалина можно использовать в качестве фиксирующей жидкости 96% спирт. При применении спирта толщина кусочков ткани не должна превышать 0,5 см. Фиксирующую жидкость во всех случаях через сутки необходимо заменить свежей. Патологический материал фиксируют в стеклянной посуде. Головной, спинной мозг и другие нервные ткани лучше фиксировать в 10% нейтральном формалине. Нейтрализуется формалин прибавлением в продажный формалин сухого мела или углекислой магнезии до 1/10-1/20 его объема. Для фиксации кусочков мозга можно использовать также 96% спирт, жидкость Карнуа или смесь Буэн-Дюбоска. В холодное время года во избежание промерзания при пересылке материал перекладывают в 30-50% раствор глицерина, приготовленный на 10% формалине, или в 70% спирт, или в насыщенный раствор поваренной соли. На банку с кусочками органов и тканей наклеивают ярлык с указанием номера или клички животного, а внутрь ее опускают этикетку из плотной бумаги или картона с написанным на ней простым (не химическим) карандашом номером животного. Помещать в одну посуду несколько объектов исследования от разных животных можно только при том условии, если каждый из них завязывают в марлю вместе с отдельной этикеткой.
Упаковка и пересылка патологического материала
Трупы мелких животных, части трупов крупных животных и отдельные органы в свежем (нефиксированном) виде отправляют для исследования в лабораторию только с нарочным. Посылаемый материал, особенно от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, должен быть тщательно упакован в плотный деревянный или металлический ящик, чтобы предупредить возможность рассеивания инфекции в пути. Перед упаковкой материал необходимо завернуть в холст или мешковину, смоченную дезинфицирующим раствором (фенольного креолина, лизола, известкового молока), и уложить в ящик со стружками, мякиной или опилками.
Части органов, жидкости, отправляемые в лабораторию почтой в фиксированном или консервированном виде, должны быть помещены в герметически закупоренную стеклянную посуду с притертой стеклянной, пластмассовой, резиновой или корковой пробкой. Пробка должна быть закреплена проволокой или бечевкой и залита менделеевской замазкой (сургучом, смолкой, парафином или воском), чтобы укупорка была непроницаемой для жидкости. Укупоренную посуду вкладывают в прочный плотный ящик и хорошо обкладывают ватой, паклей, стружками, опилками или другими упаковочными материалами. Кости обертывают целлофаном, полиэтиленовой пленкой или смоченными в дезинфицирующем растворе марлей или полотном и также упаковываются в ящики.
При пересылке почтой или с нарочным патологического материала от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, или явно инфицированного материала упаковка должна гарантировать доставку материала в целости и исключить возможность рассеивания возбудителей инфекции. На лицевой стороне посылки вверху должна быть надпись: «Осторожно — стекло» и «Верх».
Стеклянную посуду, в которой заключен посылаемый материал с подозрением на наличие особо опасных болезней, обязательно упаковывают в металлическую коробку, которую запаивают, пломбируют, или опечатывают, а затем упаковывают еще в деревянный ящик. Если такой материал доставляют с нарочным, можно отправлять его в стеклянной, герметически закупоренной посуде, без металлической коробки, но в деревянном ящике.
На взятый патологический материал составляют сопроводительный документ. Если при вскрытии посылки в лаборатории будут установлены несоответствие сопроводительному документу или порча патологического материала, об этом обязательно составляют акт, копию которого отправляют ветеринарному врачу, направившему материал в лабораторию.

Приборы и инструменты, используемые в ветеринарной практике. Правила стерилизации шприцов и игл
Инструменты
Различные иглы и шприцы.
Иглы
Игла имеет стержень и оливу. Стержень иглы готовится из нержавеющей стали, олива готовится из латуни. По назначению иглы подразделяются на инъекционные и кровопускательные. Инъекционные, в свою очередь, делятся на иглы для внутрикожного, подкожного и внутримышечного введения. У игл для внутрикожного введения стержень очень короткий, имеет небольшой диаметр. Иглы для подкожного введения имеют более длинный стержень с большим диаметром. Иглы для внутримышечного введения имеют длинный стержень и большой диаметр.
Кровопускательные иглы называются по фамилии автора и отличаются друг от друга формой оливы.
Игла Боброва имеет короткий стержень и круглую оливу;
Игла Ананьева имеет длинный стержень, круглую оливу, на стержне имеется манжетка;
Игла Сайковича имеет стержень и четырехгранную оливу, при взятии крови самая удобная;
Игла Каспера не имеет оливы, но на стержне имеется треугольная металлическая пластинка;
Игла Цирендоржиева применяется для взятия крови из уха верблюда;
Игла Хабалова похожа на шило, полностью металлическая, имеет мощную тяжелую металлическую ручку и короткий стержень с большим диаметром. Применяется для тотального обескровливания животных;
Игла для тотального обескровливания животных;
Игла для тотального обескровливания, без оливы, на стержне есть круглая пластмассовая пластинка;
Двойная игла, имеет пластмассовый корпус, к которому припаяны две иглы с ушками. Используется для вакцинации кроликов против миксоматоза.
Шприцы
Шприц состоит из цилиндра, с двух сторон цилиндра – оправа из латуни. Имеется канюля, тоже из латуни, к ней присоединяется игла. Любой шприц имеет поршень. На поршне у многих шприцов имеется дозатор (бегунок, винт).
Шприц системы Рекорд – 1, 2, 5, 10, 20, 100, 200 мл. имеет стеклянный цилиндр, металлическую оправу, канюлю и поршень. Дозатора нет, деления нанесены на стекло цилиндра. Недостатки: отсутствие дозатора, во время кипячения деления могут стираться, легко ломается (стеклянный). Не подходит для массовых вакцинаций.
Шприц системы Провац. Емкости те же. Деление нанесено на поршень, имеется дозатор, работать удобнее. Недостаток: деления плохо заметны, стеклянный цилиндр может сломаться;
Шприц системы Рекорд-Провац. Комбинированный шприц, деления на цилиндре и на поршне, имеется дозатор. Емкости те же. Недостаток: стеклянный, может сломаться.
Шприц системы Люэра. Емкость 1-20мл. Недостатки: полностью стеклянный, нет дозатора, деления только на цилиндре. Для вакцинации не применяется. Применяется для введения йодистых препаратов, в акушерстве.
Шприц системы Люэра полностью пластмассовый, одноразовый. Недостатки: при кипячении плавится, деления только на цилиндре. Преимущества: легкий, удобный, игла острая.
Шприц Жанэ. Применяется для введения больших объемов жидкостей внутривенно. стеклянный цилиндр, металлическая оправа, длинная металлическая канюля, к оправе припаиваются полукольца, имеется мощный поршень, имеется дозатор. Шприц выпускается на 50, 100, 150, 200, 250мл.
Шприц Рекорд-Провац в двойной металлической оправе. Двойная металлическая оправа, деления на стеклянном цилиндре, металлический поршень, имеется дозатор. Неудобный, тяжелый, но прочный.
Шприц-вакцинатор. Старая модель: стеклянный цилиндр. Металлическая оправа с припаянными кольцами, есть металлический поршень с пружиной. Более новая: полностью металлический цилиндр и поршень, для удобства при работе припаяны кольца к цилиндру. К металлическому корпусу присоединяется заборная трубка, которая опускается во флакон с биопрепаратом. Имеется дозатор, применяется в птицеводстве. Современная модель: пластмассовый вакцинатор, легкий, удобный, но нет дозатора. Американская модель: с дозатором, + есть звук, но нельзя стерилизовать.
Шприц-дозатор. Устаревший вариант: полностью металлический. С его помощью можно вакцинировать животных и можно задавать лекарственные препараты через рот. Имеет тройник, к нему можно прикрепить заборную трубочку. ШД-01 – более усовершенствованный, напоминает аппарат Шилова, имеет ремень, две трубки: заборная и напорная, на напорную одевается игла. Применяется для массовых вакцинаций. Дозатор вставлен в рукоятку. Деления нанесены на корпус цилиндра. Удобный для массовых вакцинаций.
Шприц-ирригатор. Применяется для орошения носовой полоти МРС, КРС и для орошения ран. Состоит из трубки, цоколя, краника, ниппель-гайки, кнопки с пружиной, которая перекрывает доступ воздуха в жидкость, соединительных шлангов.
Репетирующий шприц применяют для массовых ветеринарных впрыскиваний. Сконструирован в виде ручного всасывающее-нагнетательного насоса. Можно вводить вещества или отсасывать жидкости. Состоит из металлической рукоятки, двойной металлической оправы, дозатора, поршня, двух трубок. Принцип работы: впрыскивание содержимого цилиндра происходит во время рабочего хода поршня (после нажатия на плечи рукоятки шприца). Наполнение цилиндра происходит во время возвратного хода поршня, вызываемого действием пружины, распирающий плечи рукоятки после прекращения нажима руки.
Стерилизация шприцов и игл
Дезраствор – промыть – разобрать – прокипятить в стерилизаторах, так как при кипячении поршень и стекло расширяются. Кипятить обязательно дистиллированной водой. Если нет дистиллированной – нужно обычную воду прокипятить, остудить и профильтровать через фильтровальную бумагу (все это 2 раза) – потом можно использовать для стерилизации. Инструменты необходимо кипятить 30-120 минут (смотря, какие вакцины использовались). Шприцы собирают в остуженном виде. Если шприц после вакцинации разобрать не сразу – поршень может прикипеть. Иглы после работы промываются, чистятся мандреном. Стерилизовать можно вместе со шприцами, можно отдельно, но кладут иглы уже в кипящую воду.
Приборы, применяемые в ветеринарной практике
Кран Агали. Применяется для массовых вакцинаций животных. Имеет простое строение: металлический корпус, в котором расположен краник с 3мя отверстиями, имеется ручка. Одно отверстие соединяется через шланг с иглой, другое – с канюлей шприца, третье – через шланг с резервуаром. Недостаток – постоянно нужно помнить положение ручки крана. Стерилизуют: промывают с помощью шприца дистиллированной водой, потом спиртом, потом сушат.
Клапанник Демина – более совершенный прибор. Металлический корпус, от которого отходят 3 штуцера, 1й – для присоединения шланга с иглой, 2й – для соединения со шприцом, 3й – для соединения с трубкой от резервуара. Внутри корпуса имеется клапанное устройство. Также имеется крышка с резьбой. Недостатки: клапаны после вакцинации приходится кипятить, и после 3х-4х раз выходят из строя.
Прибор Лукацкого. Применяется для внутрикожного введения аллергенов или при вакцинациях животных. Ручка, изогнутая пластинка, клеммы для фиксации шприца, выемка для захватывания складки кожи.
Прибор Филина. Применяется для взятия крови у заразно больных животных. Имеет металлический кожух, куда вставляется стеклянная пробирка, к корпусу припаяна канавка, куда вставляется игла для взятия крови. Также есть полностью пластмассовый вариант (одноразовый);
Аппарат Шилова. Применяется для массовой вакцинации животных, для введения лекарственных препаратов, в лабораториях как дозатор при постановке серологических реакций. Части: тройник металлической коробки, 2 трубки (напорная, заборная), рукоятка, 2 зажима, ремешок. Внутри тройника имеется канавка, по которой двигается металлический шарик;
БИ (безигольный инъектор) БИ-7 («Овод», «Пчелка»). Применяется для внутрикожных введений. В основном применяют в хозяйствах для туберкулизиназии животных. Состоит из рукоятки, металлического корпуса, головки с сопловидным отверстием, силовой части, фиксатора. Принцип работы: использование кинетической энергии струи жидкости, вытекающей из сопловидного отверстия под давлением. Стерилизуется простреливанием спирта.
Кутиметр, применяется для измерения толщины кожной складки до и после введения туберкулина.
ДАГ (дисковый аэрозольный генератор) – 1, -2, -3. Для аэрозольной обработки животных и птиц.
САГ (струйный аэрозольный генератор) – 1, -2, -3.
Грелка-качалка Артемичева применяется для постановки серологических реакций в птицеводстве. Состоит из деревянной коробки с раздвижной крышкой, ящика у дна для предметных стекол, внутри коробки имеется качающееся устройство (стекло-столик) с девятью гнездами для предметных стекол и со встроенным термометром. Температура столика не должна превышать температуру тела птицы. Если температура выше или ниже этих показателей – регулируют с помощью задвижки (с боков коробки).
Инъектор полуавтоматический ИП-1. Применяется для массовой вакцинации молодняка птиц против болезни Марека. Также этот прибор можно использовать для более взрослых птиц и для мелких животных для внутримышечного и подкожного введения вакцины. Представляет собой переносной прибор настольного типа, состоит из 2 блоков: функционального и электронного. Внутри корпуса функционального блока расположен соленоид на специальной опоре, к нему свободно прикреплен шприц. На каркасе функционального блока расположен пружинный запор для флакона с биопрепаратами. Электронный блок состоит из кожуха и лицевой панели, на которой расположены тумблер, сигнальная лампочка, счетчик, розетка. Производительность этого прибора 2,5тыс инъекций в час, игла меняется через 200 инъекций.
Профилактические биопрепараты
Вакцины, анатоксины.
Вакцины – биологические препараты, приготовленные из возбудителей инфекционных болезней и продуктов их жизнедеятельности. Так как вирусы не выделяют продукты жизнедеятельности, противовирусные вакцины содержат только ослабленные или убитые вирусы или их компоненты. Вакцины делятся на живые и инактивированные.
Живые:
Неослабленные;
Ослабленные:
Естественно;
Искусственно;
Депонированные;
Инактивированные:
Депонированные;
Моновалентные;
Поливалентные;
Анатоксины;
Ассоциированные.
Живые
Их готовят из селекционированных авирулентных или слабовирулентных естественных, то есть выделенных из природы, или аттенуированных, то есть искусственно ослабленных, штаммов.
Методы ослабления вирулентных свойств возбудителя
Метод пассажа возбудителя через организм невосприимчивых или маловосприимчивых животных;
Метод пассажа через питательные среды;
Использование химических веществ (кислот щелочей, красителей);
Биологические факторы (антибиотики, фаги);
Физические факторы (высокая температура, низкая, УФ лучи, ультразвук, ионизация и т.д.).
Вакцины из ослабленных природных штаммов:
Сухая живая вирус-вакцина против болезни Ньюкасла из штамма Ла-Сота.
Искусственно ослабленные вакцины:
Сухая живая вакцина против листериоза с/х животных из штамма АУФ.
Инактивированные
Получают путем размножения производственного эпизоотического штамма с последующей инактивацией с помощью физических или химических факторов.Физические: температурное воздействие, химические: фенол, формалин, этанол, тиомерсал.
Для повышения эффективности инактивированных вакцин применяют депонирующие средства (адъюванты), на которых микробные тела адсорбируются. Алюмокалиевые квасцы, гидроокись алюминия, фосфат алюминия, минеральные масла с эмульгаторами. Добавление депонирующих веществ к инактивированным культурам необходимо для создания депо на месте введения препарата, что способствует длительному воздействию микробного антигена на организм животного и обусловливает более высокий уровень образования антител.
В зависимости от количества типов или видов возбудителей, включенных в состав вакцины, различают моно- и поливалентные, ассоциированные и смешанные вакцины.
Моновалентные: содержат антигены одного вида микроба.
Вакцина против рожи свиней из штамма ВР-2 живая сухая;
Поливалентные: из нескольких серотипов или вариантов 1 вида микроорганизма. Также к ним относят вакцины, которые содержат антигены для различных видов животных.
Ассоциированные: содержат антигены разных видов возбудителей бактериальных и вирусных инфекций.
Вакцина ОКЗ – против острых кишечных заболеваний (колибактериоз, сальмонеллез, клебсиеллёз, протейная инфекция).
Вакцина ассоциированная против миксоматоза и вирусной геморрагической болезни кроликов.
Смешанные: комбинированные, разновидность ассоциированых. Представляют собой смесь вирусных и бактериальных антигенов.
В зависимости от видовой принадлежности различают гомологические и гетерологические вакцины. Гомологические готовят из того вида вируса, против которого предполагается создать иммунитет. Гетерологичесике – из вирусов другого вида, имеющих в совеем составе аналогичные антигены и обладающие перекрестной иммуногенностью.
В зависимости от биологической системы, используемой для культивирования вакцинного штамма, противовирусные вакцины делят на тканевые, лапинизированные, авианизированные, культуральные.
Лапинизированная вакцина против ящура и классической чумы свиней.
Химические: сплит-вакцины или субъединичные вакцины. Сплит-вакцины готовят из продуктов химического расщепления вирионов. Содержат все антигены, освобожденные от генома во время химического расщепления. Субъединичные вакцины содержат в своем составе только 1 протективный антиген.
Генноинженерные: очищенные вирусные белки, полученные с помощью клонированных вирусных ДНК. При этом в качестве продуцента протективного антигена наиболее часто используют микроорганизмы. В плазмиду микроорганизмов встраивают ген, ответственный за синтез протективного антигена.
Синтетические: получают путем искусственного синтеза полипептидов с определенным набором или последовательностью чередования АК.
Принцип изготовления живых вакцин
Приобретение вакцинного штамма;
Культивирование вакцинного штамма на питательных средах (для бактериальных вакцин);
Стандартизация (доведение до определенной концентрации микробных тел в 1 мл вакцины);
Фасовка (по ампулам и по флаконам);
Лиофилизация;
Контроль: чистота роста - МПБ, МПА, Китта-Тароцци (анаэробы), Сабуро (плесневые грибы) – 10 дней, безвредность, иммуногенность;Принцип изготовления инактивированных вакцин
Приобретение вакцинного штамма;
Культивирование вакцинного штамма на питательных средах;
Стандартизация;
Добавление адъюванта;
Инактивация микробной массы (введение в культуру антисептических веществ – формалин, фенол, этанол, тиомерсал; 37-38 ºС на определенное время);
Фасовка;
Контроль: стерильность (посев на те же среды, 10 дней), безвредность, иммуногенность.
Анатоксины
Это токсин, утративший свою токсичность под действием химических или физических факторов, но сохранивший антигенные и иммуногенные свойства. Анатоксины – аналоги инактивированных вакцин. Выпускают различные анатоксины (концентрированный столбнячный анатоксин, анатоксин противоботулинический и др.).

Диагностические биопрепараты
Предназначены для диагностики (распознавания) инфекционных болезней, также для идентификации (определения вида) возбудителя или для типизации (определения сероварианта или серотипа возбудителя).
Антигены, диагностические сыворотки, аллергены, бактериофаги.
Антигены
Микробные белки или инактивированные суспензии соответствующих назначению штаммов возбудителей инфекционных болезней животных. По известным антигенам определяют наличие специфических антител в сыворотке крови, крови, молоке, вагинальной слизи.
Антиген сибиреязвенный бактерийный стандартный – для контроля активности сибиреязвенной преципитирующей сыворотки;
Единый бруцеллезный антиген – для постановки РА, РСК,РДСК;
Бруцеллезный антиген для кольцевой реакции с молоком;
Листериозные антигены (для РСК и для РА)
Туберкулезный антиген для РСК;
Общий принцип изготовления
Подбор соответствующих штаммов возбудителя;
Культивирование соответствующих штаммов возбудителей на питательных средах;
Гомогенизация и стандартизация микробной массы;
Инактивация добавлением антисептических веществ либо нагреванием;
Фасовка;
Контроль на стерильность, специфичность, активность.
Диагностические сыворотки
Для идентификации или типизации возбудителей инфекционных болезней или для обнаружения антигена в исследуемом материале путем постановки серологических реакций. В зависимости от вида серологической реакции, при постановке которой применяются диагностические сыворотки, и делят н следующие группы:
Агглютинирующие диагностические сыворотки (РА);
Преципитирующие (РП);
Антитоксические (РН);
Флюоресцирующие (люминесцирующие) сыворотки (МФА, РИФ);
Агглютинирующие
Применяют для определения вида возбудителя и его серовара (серотипа) в капельной или пробирочной РА.
Групповые агглютинирующие лептоспирозные сыворотки;
Преципитирующие
Сибиреязвенная преципитирующая сыворотка для постановки РП.
Антитоксические
Применяются для определения типа токсина выделенной культуры токсигенного возбудителя и для обнаружения токсина в исследуемом материале. Антитоксические типоспецифические сыворотки клостридиум перфрингенс типов А, В, С, Д, Е;
Люминесцирующие
Сущность МФА заключается в том, что по известному антителу, меченному флюорохромом, определяют неизвестный антиген. Окрашенные флюорохромами иммунные глобулины сывороток, взаимодействуя с антигенами, образуют комплексы, ярко светящиеся зеленым или желто-зеленым светом при люминесцентной микроскопии. МФА применяется для диагностики таких заболеваний, как сибирская язва, рожа свиней, листериоза, сальмонеллезов, кампилобактериоза, туляремии, бруцеллеза и др.
Для приготовления флюоресцирующих сывороток могут быть использованы любые диагностические сыворотки.
Общие принципы изготовления диагностических сывороток
Подбор штаммов возбудителя;
Культивирование соответствующих штаммов на питательных средах;
Стандартизация до определенной концентрации микробов в 1 мл;
Инактивация методом нагревания;
Гипериммунизация животных (лошадей, волов, овец, кроликов);
Взятие крови через 8-10 дней после последней инъекции антигена;
Отделение сыворотки;
Консервирование сыворотки (фенол, тиомерсал);
Отстаивание в течение 2 месяцев;
Фильтрация через бактериальные фильтры;
Фасовка, лиофильная сушка;
Контроль: стерильность, активность, специфичность.
Аллергены
Микробные белки и продукты жизнедеятельности микроорганизмов. Применение основано на явлении инфекционной аллергии, т.е. гиперчувствительности замедленного типа в ответ на введение в ранее инфицированный организм гомологичного антигена.
Бруцеллин ВИЭФ; ППД-туберкулин для млекопитающих, для птиц, КАМ-аллерген; Маллеин – для диагностики сапа у лошадей.
Изготовление аллергенов. Каждый аллерген готовится по своей технологии. Маллеин:
Стерильный фильтрат убитой нагреванием бульонной культуры сапной бактерии. Имеет вид прозрачной светло-желтой стерильной жидкости. Представляет собой продукт жизнедеятельности сапных культур. Для получения маллеина вирулентные штаммы засевают в колбы с МПБ с добавлением глицерина, выдерживают при температуре 37 ºС в течение 4 месяцев. Автоклавируют для инактивации возбудителя. Осаждают. Фильтруют через бактериальные фильтры. Разливают Контроль на стерильность, безвредность, специфичность, активность.
Диагностические бактериофаги
Применение бактериофагов основано на явлении специфического лизиса фагами соответствующих видов или вариантов бактерий. По известному бактериофагу можно определить вид или вариант бактерий.
Для диагностики сибирской язвы выпускают 2 фага:
Сибиреязвенный фаг «К» ВИЭВ;
Сибиреязвенный фаг «Гамма» МВА.
Для диагностики листериоза выпускают 2 бактериофага:
L2A;
L4A.
Для диагностики бруцеллеза: Тб. Стафилококковые фаги. О-сальмонеллезный фаг. Коли-фаги.
Общие принципы приготовления диагностических бактериофагов
Культивирование на питательных среда авирулентных штаммов возбудителей;
Добавление соответствующих фагов для лизиса. Активность фага должна быть не ниже 10-8;
Выдерживают при температуре 37 ºС 10-17 часов;
Фильтрация через стерилизующие асбестовые пластинки;
Фасовка по флаконам;
Контроль (стерильность, специфичность, активность).

Лечебно-профилактические биопрепараты
Применяются для профилактики и лечения больных животных.
Гипериммунные сыворотки (моновалентные и поливалентные; антибактериальные, противовирусные, антитоксические, сыворотка реконвалесцентов), гамма-глобулины, бактериофаги.
Гипериммунные сыворотки
Биологические иммунные препараты, полученные из сыворотки крови животных, гипериммунизированных бактериальными или вирусными антигенами и содержащие большое количество антител против какого-либо возбудителя.
Антибактериальные, противовирусные, антитоксические, смешанные, реконвалесцентов
Моновалентные – против 1 вида (сероварианта), поливалентные – против нескольких, либо против одного вида возбудителя у разных видов животных.
Принцип изготовления (на предприятиях биологической промышленности)
Подбор продуцентов (чаще лошади, также волы, ослы, мулы, реже свиньи, овцы, кролики), приобретают их в благополучных по инфекционным и кровепаразитарным заболеваниям;
Карантинирование животных–продуцентов, в это же время проводят их всесторонний осмотр;
Создание грунд-иммунитета (вакцинируют соответствующей вакциной);
Гипериммунизация животных (многократное парентеральное введение антигена в нарастающих дозах);
Взятие крови (у лошадей 16-20 мл на 1 кг ЖМ, КРС 16 мл/кг, овцы 14 мл/кг, свиньи 11 мл/кг). Первое взятие – через 7-10 дней после последнего введения антигена;
Получение сыворотки: кровь в термостат при температуре 37 ºC на 3 часа, чтобы свернулась, затем в прохладное место (8 ºС) на 24-48 часов. Образовавшуюся сыворотку сливают в стерильную посуду;
Консервирование (фенол, тиомерсал);
Отстаивание в течение 2 месяцев;
Фильтрация через бактериальные фильтры;
Фасовка;
Контроль (стерильность, безвредность, активность).
Создают быстрый иммунитет (в течение суток), но он является пассивным, непродолжительным (10-14 дней).
Лечебные дозы в 5-10 раз больше профилактических. Большие дозы сыворотки вводятся в разные точки. Если состояние тяжелое – можно ввести внутривенно, но предварительно подогреть. Могут вызвать анафилактический шок или подъем температуры.
Иммунные глобулины
Представляют собой 10% водный раствор глобулиновой фракции белка, выделенной из соответствующей иммунной сыворотки. Иммунные глобулины – концентрат специфически активных белков (иммуноглобулинов), освобожденных от балластных белковых фракций.
Получают из гипериммунных сывороток.
В гипериммунной сыворотке содержатся альфа-, бета-, гамма-глобулины, альбумины. При изготовлении иммунных глобулинов из гипериммунной сыворотки осаждают балластные белки (альфа-, бета-глобулины, альбумины). Методов осаждения очень много. Самый распространенный – фракционное осаждение белков этанолом при низких температурах (3 этапа). Другие методы: высаливание нейтральными солями, для этого используют сернокислый аммоний, сульфат натрия, гипосульфит. Риваноловый метод. Диализ, ферментация и т.д.
Иммуноглобулины в меньших дозах оказывают больший лечебный или профилактический эффект по сравнению с иммунными сыворотками.
Контроль иммунных глобулинов: стерильность, активность, безвредность.
Бактериофаги
Могут быть моно-, би- и полифагами.
Коли-гертнер фаг.
Принцип изготовления
Напоминает принцип изготовления диагностических, но есть разница.
Культивирование на питательных средах фагочувствительных штаммов;
Добавление фагов, 6-10 часов для лизиса;
Фильтрация;
Консервирование смесью хинозола и фенола;
Фасовка;
Контроль (стерильность, безвредность, активность).
Активность: десятичные разведения до 10-11, в каждую пробирку по 0,05 мл соответствующей культуры. термостат на 24 часа (37 градусов). Титр начинают определять через 6 часов. Титр – наибольшее разведение бактериофага, в котором бульон остается прозрачным. Фаг считается активным при титре не ниже 10-7.

Уборка и обеззараживание навоза. Особенности обеззараживания навоза в животноводческих комплексах
Биологический метод
Биотермическое обеззараживание навоза. Подвергают подстилочный навоз и твердую фракцию жидкого навоза влажностью до 70%. Для этого отводят специальную площадку на расстоянии 200 м от фермы, вдали от водоемов. Выкапывают яму глубиной 25 см, ширина до 3,5 м, длина произвольная. На дно – глину, утрамбовывают. На неё либо солому, либо торф, либо опил слоем 30-40 см. Затем рыхло укладывают навоз. Штабель обкладывают сверху торфом, опилками или соломой слоем 20-40 см. На этот слой кладут слой земли. Время выдерживания навоза в таких штабелях в теплый период года 2 месяца с момента поднятия температуры до 60 ºC. Зимой обеззараживание идет 3 месяца. Обеззараживание навоза можно считать законченным после спадения температуры.
Химический метод
Для обеззараживания жидкого навоза. Прежде всего, навоз разделяют на твердую и жидкую фракции. В жидкую фракцию добавляют различные химические препараты. Широко используют формалин, сухую хлорную известь из расчета 1 кг хлорной извести на каждые 20 литров навозной жижи при споровых инфекциях. При неспоровых инфекциях – 0,5 кг на каждые 20 литров.
Физический метод
Обеззараживают жидкий навоз и птичий помет. Жидкий навоз обрабатывают паром при температуре 130 ºC и давлении 2 атм. в течение 10-15 минут в пароструйных аппаратах. Помет обеззараживают путем термической сушки при температуре 100-140 ºC в течение 45-60 минут. При некоторых инфекционных заболеваниях навоз от больных животных сжигают.
Оздоровительные мероприятия и ликвидация инфекционных болезней
Оздоровительные противоэпизоотические мероприятия
Комплекс мер, направленных на оздоровление хозяйства. Их проводят в неблагополучных хозяйствах. Характер проводимых оздоровительных мероприятий зависит от особенностей возбудителя болезни и конкретных условий.
Мероприятия, направленные на 1 звено: выявление и обезвреживание источника инфекционных болезней. При одних заболеваний источник возбудителя инфекции уничтожается, при других – изолируется и подвергается лечению, третьих – отправляется на мясо.
Мероприятия, направленные на 2 звено: дезинфекция, дезинсекция, дератизация, обеззараживание кормов, уничтожение и утилизация трупов, обеззараживание продукции животноводства, утилизация навоза.Мероприятия, направленные на 3 звено: улучшают условия кормления и содержания, проводят иммунизацию животных, также проводят иммунизацию в частном секторе.
Оздоровительные мероприятия проводятся 2 путями:
Полная замена неблагополучного стада;
Метод постепенной замены стада, т.е. удаление из стада положительно реагирующих при различных исследованиях животных.
На неблагополучные хозяйства при возникновении заболевания накладывают карантин или ограничения.
Карантин накладывается в случае возникновения заболевания, характеризующегося широким распространением, например, сибирская язва, ящур, чума свиней и т.д. При наложении карантина обязательно определяют границы эпизоотического очага, неблагополучного пункта и угрожаемую зону, и проводят конкретные мероприятия.
Ограничения накладываются при инфекционных заболеваниях, при которых менее высокая степень разобщенности животных.
Сроки наложения карантина или ограничений зависят от продолжительности инкубационного периода, микробовыделения или вирусовыделения. Чем длиннее этот срок, тем более длительный срок карантина или ограничений. Для снятия карантина или ограничения учитывают последний случай выздоровления или последний случай падежа животного, если проводилась вакцинация – то последний срок выработки иммунитета. Перед снятием карантина или ограничения проводится весь комплекс ветеринарно-санитарных мероприятий.

Туберкулинизация животных (методы, место введения, доза, учёт реакции)
В настоящее время прижизненная диагностика туберкулёза затруднена из-за широкой распространенности атипичных микобактерий. Для дифференциации используют симультанную пробу с КАМ-аллергеном.
Яков, лошадей, буйволов, свиней с 2 месяцев. Верблюдов с 1 года, маралов, оленей, пушных верей и птиц с 6 мес. Коров, буйволов с 2 месяцев. Коров, буйволов, яков, верблюдов исследуют независимо от периода беременности. Коз, овец, свиноматок, лошадей, собак, самок пушных зверей – не ранее месяца после родов. Не разрешается исследовать животных аллергическим методом на туберкулез в течение 3 недель после вакцинации или после обработки против гельминтов.
Однократна внутрикожная туберкулиновая проба. Применяется у КРС в благополучных хозяйствах, также у свиней, верблюдов, оленей, маралов, буйволов, собак, кошек, пушных зверей, птиц. Туберкулин вводят в дозе 0,2 мл КРС, буйволам в области средней трети шеи. Быкам-производителям туберкулин вводят в подхвостовую складку, верблюдам в кожу брюшной стенки в области паха, свиньям с наружной поверхности уха, отступя 2 см от его основания. 2-3 месячным поросятам туберкулин можно вводить в кожу поясницы на расстоянии 5-8 см от позвоночника. Овцам, козам туберкулин вводится под кожу нижнего века. Собакам и пушным зверям, кроме норок, туберкулин вводится в области внутренней поверхности бедра. Норкам вводят интрапальпебрально, то есть в верхнее веко. Кошкам туберкулин вводят в области внутренней поверхности уха, курам – в кожу бородки, индейкам в подчелюстную сережку, гусям и уткам в подчелюстную складку. Учитывают и оценивают реакцию на введение туберкулина у КРС, буйволов, яков, верблюдов, маралов, оленей через 72 часа. У коз, овец, свиней, собак, кошек, пушных зверей через 48 часов. У птиц – через 30-36 часов. У животных, инфицированных микобактериями, реакция на туберкулин выражается в возникновении разлитой припухлости, тестоватой, не имеющей четких границ. Это сопровождается гиперемией и болезненностью кожи. В некоторых случаях припухлость бывает плотной, безболезненной, имеет четкие границы. При обнаружении припухлости у КРС, буйволов, яков, верблюдов, оленей, маралов кутиметром измеряют толщину кожной складки и сравнивают с толщиной складки неизмененной кожи вблизи места введения туберкулина. Животных считают реагирующими на туберкулин при утолщении кожной складки на 3 мм и более. Быков-производителей, овец, коз, свиней, собак, кошек, пушных зверей и птиц считают реагирующими при образовании припухлости в месте введения туберкулина.
Двукратная внутрикожная туберкулиновая проба применяется у КРС, буйволов, яков, верблюдов, маралов, оленей в неблагополучных по туберкулезу хозяйствах. В день учета реакции животным, не реагировавшим на первое введение туберкулина в дозе 10000 МЕ в 0,2 мл, вводят туберкулин повторно в той же дозе и в то же место, реакцию учитывают через 24 часа. Животных считают реагирующими при утолщении кожной складки на 5 мм и более.
Глазная проба (офтальмопроба) применяется при исследовании лошадей и у КРС. При этой пробе 3-5 капель туберкулина наносят на конъюнктиву глаза при оттянутом нижнем веке. Через 5-6 дней вводят туберкулин повторно. После первого введения реакцию учитывают через 6, 9, 12, 24 часа. После второго введения реакцию учитывают через 3, 4, 6, 9, 12 часов. Животных считают реагирующими при образовании слизисто-гнойного или гнойного секрета, накапливающегося в конъюнктивальном мешке или вытекающего в виде шнура из внутреннего угла глаза. Конъюнктива при этом гиперемирована и отечна.
Внутривенная туберкулиновая проба. Применяется только у взрослого крупного рогатого скота, за исключением коров за месяц до отела и в течение месяца после него. Этим методом нельзя исследовать животных с температурой тела выше 39,5 градусов. Туберкулин вводят внутривенно в дозе 1 мл на каждые 100 кг живой массы, после введения начинают измерять температуру у животного: через 3, 6, 9 часов. Реагирующими считают животных с повышением температуры тела на 1 ºС и более.
Если в благополучном хозяйстве при проведении плановых аллергических исследований КРС выявляют реагирующих животных, их дополнительно исследуют либо офтальмопробой, либо внутривенной туберкулиновой пробой. Реагирующих на эти пробы животных подвергают комиссионному диагностическому убою. При обнаружении типичных для туберкулеза патологических изменений диагноз считают установленным. Если характерные изменения органов и тканей не обнаружены, проводят бактериологические исследования биоматериала от убитых животных. При выделении культур микобактерий бычьего, человеческого вида или при положительной биопробе на лабораторных животных диагноз также считается установленным. Ели реакция на офтальмопробу или внутривенное введение отрицательны, всех животных данного хозяйства проверяют симультанной аллергической пробой. В случае подтверждения факта сенсибилизации животных атипичными микобактериями стадо считают благополучным по туберкулезу, и последующие плановые исследования проводят с применением симультанной пробы.
При выявлении в благополучном хозяйстве реагирующих на туберкулин свиней, коз, овец проводят диагностический убой 3-5 животных с наиболее выраженными реакциями. Независимо от наличия или отсутствия патологических изменений отбирают материал для бактериологического исследования. В случае выделения микобактерий бычьего, человеческого вида или положительной биопробы туберкулез считают установленным.
Если у павшей или убитой птицы обнаруживают свойственные туберкулезу патологические изменения, делают бактериоскопию биоматериала. При положительном результате диагноз считаю установленным.
У животных других видов туберкулез устанавливают на основании результатов патологоанатомического и бактериологического исследования.

Приложенные файлы

  • docx 9186387
    Размер файла: 158 kB Загрузок: 0

Добавить комментарий